病毒包装实验整体流程及原理（慢病毒、腺病毒） 

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病毒感染细胞实验整体流程及原理

目的基因不能直接整合到大多数真核细胞，常用的手段是将目的基因包装成病毒来感染细胞，从而得到表达满足实验需求。

1、病毒的种类

病毒有很多种，常见的有慢病毒和腺病毒 1.1慢病毒 1.1.1原理

慢病毒（Lentivirus）是逆转录病毒的一种。构建的siRNA / miRNA慢病毒载体，与化学合成的siRNA 和基于瞬时表达载体构建的普通 siRNA 载体相比，一方面可以扩增替代瞬时表达载体使用，另一方面，Lentivirus-siRNA 克隆经过慢病毒包装系统包装后，可用于感染依靠传统转染试剂难于转染的细胞系如原代细胞、悬浮细胞和处于非分裂状态的细胞，并且在感染后可以整合到受感染细胞的基因组，进行长时间的稳定表达。 1.1.2特点

1） 直接包装成为假病毒颗粒，对分裂和非分裂细胞均有感染作用，适合 RNAi 研究和体内实验中难于转染的细胞 (比如神经元细胞、干细胞或其它原代细胞)。 2） 可以通过简单方式，在短时间内获得稳定表达特定基因的多种细胞株。 3） 可用于基因敲除、基因治疗和转基因动物研究。 4） 无需任何转染试剂，操作简便。 5） 可以根据客户需要制备多种标记。 1.1.3慢病毒包装简要流程：

1） 含有目的基因的慢病毒 RNAi 干扰载体的构建和质粒纯化提取。

2） 慢病毒载体，包装系统共转染病毒包装细胞293T等。 3） 培养 48hrs - 72hrs 左右，收集含有病毒的上清培养液。 4） 病毒的纯化和浓缩。 5） 分装、- 80 ℃保存。

6） 滴度测定目的基因检定，并出具检测报告。 1.2、腺病毒 1.2.1原理

腺病毒(Adenovirus，Ad)是一种无包膜的线状双链DNA病毒，其复制不依赖于宿主细胞的分裂。有近50个血清型，大多数Ad载体都是基于血清型2和5，通过转基因的方式取代E1和E3基因，降低病毒的复制能力。这些重组病毒仅在高水平表达E1和E3基因的细胞中复制，因此是一种适用于治疗的高效控制系统。 1.2.2特点

1） 几乎可以感染所有类型的细胞

2） 可以获得复制缺陷型 (E1 和 E3 缺失) 的腺病毒

3） 病毒滴度高，产生病毒经过浓缩后可以达到 1012 PFU/mL，能有效的进行增殖。 4） 腺病毒载体感染宿主的范围比较广，制备容易，操作简单.

5） 感染细胞时，不整合到染色体中，不存在激活致癌基因或插入突变等危险，生物安全性高。

1.2.3腺病毒包装简要流程

1） 构建表达 siRNA/miRNA 的腺病毒载体 2） 采用 PacI 消化纯化的质粒。

3） 消化好的腺病毒表达载体转染 293A 细胞，收获细胞以制备病毒粗提液。 4） 将病毒粗提液感染 293A 细胞以扩增病毒。 5） 分装，-80℃保存。 1.3、慢病毒和腺病毒的比较

慢病毒载体系统和腺病毒载体系统比较 病毒表达系统 病毒基因组 复制 慢病毒表达系统（Lentivirus） RNA病毒 自主复制 腺病毒表达系统（Adenovirus） 双链DNA病毒 自主复制 是否整合 病毒基因组整合于宿主基因组，长时间、稳定表达外源基因 病毒基因组游离于宿主基因组外，瞬时表达外源基因 感染分裂和不分裂细胞 感染细胞类型 感染分裂和不分裂细胞，适用于难转染的原代细胞（如神经细胞）及体内实验 表达风度 表达时间 滴度 克隆容量 中水平表达 慢（1-3天） 滴度最高可达10*8pfU/ml 可插入不超过8kb的外源片段，滴度随插入片段长度增加而降低 高水平表达 快（1-2天） 滴度最高可达10*11pfU/ml 可插入高达8kb的外源片段，滴度随插入片段长度增加而降低 高免疫原性 免疫原性 低免疫原性 2、构建目的基因到载体

2.1构建手段

一般是根据原始质粒信息确定克隆方案，有以下两种手段。

1）如果原始质粒与载体有匹配酶切位点，采用相应的内切酶切下相应片段，回收并连接到载体，酶切，并测序鉴定

2）如果没有匹配的酶切位点，则设计带有特殊接头的引物进行PCR扩增，得到目的片段，采用相应的内切酶切下相应片段，回收并连接到穿梭载体，酶切，并测序鉴定 2.2质粒载体 2.2.1概念

能够进行自主复制的环状DNA双链结构，包括真核生物的细胞器（主要指线粒体和叶绿体）中和细菌细胞拟核区以外的环状脱氧核糖核酸(DNA)分子 2.2.2特征

质粒上常有抗生素的抗性基因，例如，四环素抗性基因或卡那霉素抗性基因等。有些质粒称为附加体(episome)，这类质粒能够整合进真菌的染色体，也能从整合位置上切离下来成为游离于染色体外的DNA分子。质粒在宿主细胞体内外都可复制。通过个些特性，人们可以把一些目的DNA片断构建在质粒中，通过转化入大肠杆菌中，利用选择培养基来筛选从而不断的复制，来得到目的产物。

3、质粒DNA在大肠杆菌里转化

连接上目的基因的质粒转化大肠杆菌是为了让目的基因在大肠杆菌里扩增，然后提取质粒，以下是质粒DNA在大肠杆菌里转化的三步骤。 3.1大肠杆菌感受态细胞的制备

1）从大肠杆菌平板上挑取一个单菌落于3mlLB培养基的试管中，37℃振荡培养过夜。 2）取0.4ml菌液转接到40mlLB液体培养基中，37℃振荡培养2~3h 3）菌液转移到50ml离心管中，冰上放置10min 4）4℃离心10min（4000r/min）

5）倒出培养液，将管口倒置以便培养液流尽

6）用冰浴的0.1mol/L氯化钙10ml悬浮细胞沉淀，立即冰浴30min 7）4℃离心10min（4000r/min）

8）倒出上清液，用冰浴的0.1mol/L氯化钙2ml悬浮细胞（冰上放置） 9）分装细胞，200ul一份，4℃保存 3.2质粒DNA的转化

1）取200ul新鲜制备的感受态细胞，加入质粒DNA2ul混匀，冰浴30min 2）离心管放到42℃保温90s 3）冰浴2min

4）每管加800ulLB液体培养基，37℃培养1h（150r/min）

5）取适当体积（100ul）的复苏细胞，涂布在选择性培养基上，正置30min 6）倒置平皿37℃，12~16h，出现菌落 3.3质粒提取步骤

1）取1~4ml在LB培养基中培养过夜的菌液，12000转离心1min，弃上清

2）加250ul溶液Ⅰ/RNaseA（溶液Ⅰ为细胞悬浮液）混合液，漩涡剧烈振荡直至菌体完全重新悬浮，室温静置1-2min。

3）加入250ul溶液Ⅱ（细胞裂解液），轻柔的反复颠倒混匀5-6次。室温放置1-2min，使菌体充分裂解，直至形成澄清的裂解溶液。

4）加入350ul溶液Ⅲ（中和液），立刻轻柔地反复颠倒混匀5-6次，此时会出现白色絮状沉淀。

5）12000室温离心10min，收集上清。 6）将上清置于DNA纯化柱中，静置1-2min。