象，有利于冲洗和保护反渗透膜元件，避免遭到微生物繁殖和减少污物沉积，尤其高温季节。
十、消毒设备
细菌和细胞培养以及核酸等有关实验所用的试剂、器皿及实验用具，应严格灭菌，有的实验还要求没有核酸酶的污染，故应将实验器械，试剂等进行高压消毒。对于经过导入DNA重组分子的菌株，操作后必须进行严格的高压消毒灭活处理。
大批实验物品、试剂、培养基等可以使用大型消毒器进行消毒。一些不能经受高压、高温消毒的试剂可用滤器滤膜除菌，器皿可用紫外线照射、75%乙醇或0.1%的十二烷基硫酸钠（SDS）浸泡消毒。所有的细胞培养、细菌培养的操作，都应在紫外线消毒后的超净工作台中进行。
下面介绍立式自动压力蒸汽灭菌器（LDZX-40BI）的使用方法。
1.使用方法
（1）开盖：转动手轮，使锅盖离开密封圈。
（2）通电：连接自动进水装置。接通电源，将控制面板上电源开关按至ON处，若水位低（LOW）红灯亮，蒸发锅内属断水状态；缺水（LACK）黄灯亮，电源已正常输入。
（3）加水：打开水源，水位达到低水位，控制面板上低水位红灯和缺水黄灯相继灭，加热（1-绿灯）亮，继续加水至高水位（HIGH）绿灯亮，自动停止加水。
（4）堆放物品：需包扎的灭菌物品，体积不超过200mm×100mm×100mm为宜，各包装之间留有间隙，堆放在金属框内，这样有利于蒸汽的穿透，提高灭菌效果。
（5）密封高压锅：推横梁入立柱内，旋转手轮，使锅盖下压，充分压紧。
（6）设定温度：通电后数显窗灯亮，上层为红色，显示温度，下层为绿色，设定温度和时间。先按控制面板上确认键，绿色数显闪烁，进入温度设定状态。按一次移位键 所指相应位置闪烁，根据所需数据位置进行（单项循环）移位。按△增加键或??减少键，进行所需温度设定。设定完毕，按二次确认键，进行温度确认。
（7）设定时间：按一次确认键，将温度设定切换成时间设定；再按一次移位键，所指相应位置闪烁，根据所需数据位置进行移位；按增加键或减少键，进行所需时间设定。设定完毕，按二次确认键，进行时间设定确认。时间采用倒计时，当灭菌锅内温度达到设定温度，定时器开始倒计时。
（8）灭菌：在加热初，将下排汽阀打开至垂直位置；下排汽阀待蒸汽冒出时，压力表显示指示为100℃时，将下排汽阀推向水平关闭位置；留有微量蒸汽逸出，以控制总汽流量的15%为宜。使用最高灭菌温度为124℃～126℃，压力在0.145Mpa～0.165Mpa范围内属于安全阀设定数，超出压力部分，安全阀将自动泄压，并开始计数灭菌所需时间。灭菌完成，
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电控装置将自动关闭加热系统，伴有蜂鸣提醒；并将保温时间切换成END显示；此时，将控制面板上电源开关按至OFF处；关闭电源，停止加热待其冷却。
（9）干燥：物品灭菌后需要迅速干燥，须打开放汽阀和下排汽阀，将灭菌器内的蒸汽迅速排出，使物品上残留水蒸汽快速挥发。
（10）将盖开启，取出已灭菌物品。关闭水源，打开下排水阀，排尽灭菌室的水与水垢，以备下次使用。
2.注意事项
（1）堆放灭菌物品时，严禁堵塞安全阀的出汽孔，必须留出空位保证其空气畅通，否则安全阀因出汽孔堵塞不能工作，造成事故。
（2）灭菌液体时，应将液体灌装在硬制的耐热玻璃瓶中，以不超过3/4体积为好，瓶口选用棉花纱塞，切勿使用未打孔的橡胶或软木塞，特别注意，在灭菌液体结束时不准立即释放蒸汽，必须待压力表指针回零位方可排放余汽。
（3）对不同类型，不同灭菌物要求的物品，切勿放在一起灭菌，以免顾此失彼，造成损失。
实验二 质粒DNA的提取－碱裂解法
一、实验原理
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细菌质粒是一类双链、闭环的DNA，大小范围从1kb至200kb以上不等。各种质粒都是存在于细胞质中、独立于细胞染色体之外的自主复制的遗传成份，通常情况下可持续稳定地处于染色体外的游离状态，但在一定条件下也会可逆地整合到寄主染色体上，随着染色体的复制而复制，并通过细胞分裂传递到后代。
一般分离质粒DNA的方法都包括3个步骤：①培养细菌，使质粒DNA大量扩增；②收集和裂解细菌；③分离和纯化质粒DNA。分离制备质粒DNA的方法很多，其中常用的方法有碱裂解法、煮沸法、SDS法、羟基磷灰石层析法等。在实际操作中可以根据宿主菌株类型、质粒分子大小、碱基组成和结构等特点以及质粒DNA的用途进行选择。本实验介绍碱裂解法提取质粒DNA。
碱裂解法提取质粒DNA是根据共价闭合环状质粒DNA和线性染色体DNA在拓扑学上的差异来分离质粒DNA。在pH值介于12.0-12.5这个狭窄的范围内，线性的DNA双螺旋结构解开而被变性，尽管在这样的条件下，共价闭环质粒DNA的氢键会被断裂，但两条互补链彼此相互盘绕，仍会紧密地结合在一起。当加入pH4.8乙酸钾高盐缓冲液恢复pH至中性时，因为共价闭合环状的质粒DNA的两条互补链仍保持在一起，因此复性迅速而准确，而线性的染色体DNA的两条互补链彼此已完全分开，复性就不会那么迅速而准确，它们相互缠绕形成不溶性网状结构，而复性的质粒DNA恢复原来构型，保持可溶性状态。通过离心，染色体DNA与不稳定的大分子RNA，蛋白质-SDS复合物等一起沉淀下来而被除去，最后用酚氯仿抽提纯化上清液中的质粒DNA。
二、仪器及试剂
1.仪器及耗材：37℃恒温摇床、冷冻离心机、台式离心机、微量移液器、50 ml离心管、1.5 ml离心管管、枪头、各种规格的量筒、接种环、试剂瓶、100 l或者250 ml三角瓶、玻棒等。
2.试剂及配制：
LB培养液的配制：
酵母浸提物 5.0 g；
胰蛋白胨 10.0 g；
NaCl 10.0 g；
依次称量后加入800 ml去离子水后搅拌至完全溶解，用5 mol/L NaOH（约0.2 ml）调节培养液的pH值至7.0。再加去离子水将溶液定容至总体积为1000 ml，10磅高压灭菌20 min，冷却后4℃保存。
溶液 Ⅰ（GET缓冲液）： 25 mmol/LTris-HCl（pH8.0）, 10 mmol/L EDTA, 50 mmol/L 葡萄糖
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配制：1000 ml
1 mol/L Tris-HCl（pH8.0） 25 ml
0.5 mol/L EDTA（pH8.0） 20 ml
20% Glucose（1.11mol/L） 45 ml
dH2O 910ml
将以上溶液混合装瓶， 10磅高压灭菌20 min，冷却后4℃保存。
溶液II（变性液）：200 mmol/L NaOH ， 1% SDS
配制： 500 ml
10% SDS 50 ml
2N NaOH 50 ml
取以上溶液，用灭菌去离子水定容至500 ml，充分混匀。室温保存，此溶液保存时间最好不超过一个月，最好现用现配。
注意：SDS易产生气泡，不要剧烈搅拌。
溶液 III (醋酸钾液)：3 mol/L 醋酸钾（KAc）缓冲液，pH 5.6。 5 mol/L 冰醋酸
配制：500 ml
醋酸钾 147 g
冰醋酸 57.5 ml
加入300 ml去离子水后搅拌溶解。待醋酸钾溶解后，再加去离子水将溶液定容至500 ml。高温高压灭菌后，4℃保存。
10×TE缓冲液（pH 8.0）：100 mmol/L Tris-HCl, 10 mmol/L EDTA
配制：1000ml
1 mol/LTris-HCl 缓冲液(pH 8.0) 100ml
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500 mmol/L EDTA (pH8.0) 20 ml
加入约800 ml的去离子水，均匀混合。溶液定容至1 L。高温高压灭菌后，4℃保存。
苯酚/氯仿/异戊醇(25 : 24 : 1)：将量取25 ml Tris-HCl（pH8.0）平衡苯酚，加入24 ml 氯仿和 1 ml 异戊醇，充分混合后，移入棕色玻璃瓶中，4℃保存。
其它试剂：TE（pH8.0）、异丙醇、氯仿/异戊醇（24:1）、无水乙醇、70％乙醇、氨卞青霉素贮存液（50 mg/ml）
三、操作步骤
1.菌体的培养和收获
(1）将5～10 ml含有氨卞青霉素（AP）的LB培养基加入到容量为100ml的三角瓶中，然后接入一单菌落，并保持通气良好，于37℃ 220 rpm振摇过夜培养（约16h）后可以再转接一次，于37℃ 220 rpm振摇培养3～4 h。 (2）吸取培养的菌液1.5 ml，转入1.5 ml的离心管中，用台式离心机以12000 rpm离心3 min。弃上清，将离心管倒置，使液体尽可能流尽。
2.质粒DNA提取（碱裂解法）
（1）加100 ul 溶液Ⅰ 重悬细菌沉淀，用枪吹打直至混和均匀。
（2）加200 ul溶液 Ⅱ，盖紧管口，轻缓上下颠倒离心管以混合内容物。室温静置5 min（溶液变透明，粘稠）。
（3）加150 ul溶液 Ⅲ，轻微振荡混和10 sec，置冰上10 min (溶液出现白色沉淀)。
（4）12000 rpm离心6 min，取上清液至另一离心管（弃沉淀）。
（5）加等量的酚/氯仿/异戊醇，旋涡混匀1 min，12000 r/min离心6min，取上清液至另一离心管。
（6）加1倍异丙醇，振荡混匀，静置10 min，12000 rpm离心6 min。弃上清液，将离心管倒置于吸水纸，将附于管壁的残余液滴除净。
（7）加200 ul 70％乙醇洗涤沉淀物，台式离心机12000 rpm离心2 min，弃上清液，将沉淀在室温下晾干（或在50℃－60℃的烘箱中也可）。
（8）沉淀加20μl TE, 反复吹打使质粒DNA充分溶解，－20℃保存。
四、常见问题及可能原因
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分子生物学实验室常用仪器及使用方法
