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食品添加剂 食品加工用酶制剂 标准文本(食品安全国家标准)

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食品安全国家标准

食品添加剂 食品加工用酶制剂

1 范围

本标准适用于GB 2760允许使用的食品加工用酶制剂。 2 术语和定义 2.1 食品加工用酶制剂

由动物或植物的可食或非可食部分直接提取,或由传统或通过基因修饰的微生物(包括但不限于细菌、放线菌、真菌菌种)发酵、提取制得,用于食品加工,具有特殊催化功能的生物制品。

注:商品化的酶制剂产品允许加入易于产品贮存、使用的配料成分。

2.2 酶活力

酶在一定条件下催化某一特定反应的能力,即为酶活力,是表达酶制剂产品的一个特征性专属指标。 2.3 抗菌活性

抑制或杀灭微生物的能力。 3 产品分类

按产品形态分为固体剂型和液体剂型两类。 4 技术要求 4.1 原料要求

4.1.1 用于生产酶制剂的原料必须符合良好生产规范或相关要求,在正常使用条件下不应对最终食品产生有害健康的残留污染。

4.1.2 来源于动物的酶制剂,其动物组织必须符合肉类检疫要求. 4.1.3 来源于植物的酶制剂,其植物组织不得霉变。

4.1.4 对微生物生产菌种应进行分类学和(或)遗传学的鉴定,并应符合有关规定。菌种的保藏方法和条件应保证发酵批次之间的稳定性和可重复性。 4.2 产品要求 4.2.1 理化指标

产品酶活力在标示值的85%~115%之间。

注:酶活力测定可参考本标准附录给出的方法;对于未给出方法的产品可按相应标准中的酶活测定方法执行,允许企业自己建立酶活测定方法。

4.2.2 污染物限量

污染物限量符合表1的规定。

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表1 污染物限量 项 目 铅(Pb)/(mg/kg) 无机砷/(mg/kg) ≤ ≤ 指 标 5 3 检验方法 GB 5009.75或GB 5009.12 GB/T 5009.11

4.2.3 微生物指标:

微生物指标符合表2的规定

表2 微生物指标 项 目 菌落总数/(CFU/g或CFU/mL) 大肠菌群/(CFU/g或CFU/mL) 大肠埃希氏菌/(25g或25mL) 沙门氏菌/(25g或25mL) ≤ ≤ 指 标 50000 30 不得检出 不得检出 GB 4789.2 GB 4789.3 GB 4789.38 GB 4789.4 检验方法 注:经基因重组技术得到的微生物生产的酶制剂不应检出生产菌。

4.2.4 抗菌活性

微生物来源的酶制剂不得检出抗菌活性,抗菌活性按GB XXXX 《食品安全国家标准 微生物源酶制剂抗菌活性的测定》执行。

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附 录 A 酶活力测定方法

A.1 一般规定

本标准所用试剂和水,在没有注明其他要求时,均指分析纯试剂和GB/T 6682—2008规定的三级水。试验中所用标准溶液、杂质标准溶液、制剂及制品,在没有注明其他要求时,均按GB/T 601、GB/T 602、GB/T 603的规定制备。实验中所用溶液在未注明用何种溶剂配制时,均指水溶液。 A.2 α-淀粉酶活力的测定 A.2.1 α-淀粉酶

能水解淀粉分子链中的α-1,4葡萄糖苷键,将淀粉链切断成为短链糊精和少量麦芽糖和葡萄糖,使淀粉黏度迅速下降的酶。 A.2.2 α-淀粉酶活力

A.2.2.1 中温α-淀粉酶活力单位

1 g固体酶粉(或1 mL液体酶),于60 ℃、pH 6.0条件下,1 h液化1 g可溶性淀粉,即为1个酶活力单位,以U/g(U/mL)表示。

A.2.2.2 耐高温α-淀粉酶活力单位

1 g固体酶粉(或1 mL液体酶),于70℃、pH 6.0条件下,1 min液化1 mg可溶性淀粉,即为1个酶活力单位,以U/g(U/mL)表示。 A.2.3 原理

α-淀粉酶制剂能将淀粉分子链中的α-1,4葡萄糖苷键随机切断成长短不一的短链糊精、少量麦芽糖和葡萄糖,而使淀粉对碘呈蓝紫色的特性反应逐渐消失,呈现棕红色,其颜色消失的速度与酶活性有关,据此可通过反应后的吸光度计算酶活力。 A.2.4 试剂和材料 A.2.4.1 碘。 A.2.4.2 碘化钾。

A.2.4.3 原碘液:称取11.0 g碘和22.0 g碘化钾,用少量水使碘完全溶解,定容至500 mL,贮存于棕色瓶中。

A.2.4.4 稀碘液:吸取原碘液2.00 mL,加20.0 g碘化钾用水溶解并定容至500 mL,贮存于棕色瓶中。 A.2.4.5 可溶性淀粉溶液(20g/L):称取2.000 g(精确至0.001g)可溶性淀粉(以绝干计)于烧杯中, 用少量水调成浆状物,边搅拌边缓缓加入70 mL沸水中,然后用水分次冲洗装淀粉的烧杯,洗液倒入其中,搅拌加热至完全透明,冷却定容至100 mL。溶液现配现用。

注:可溶性淀粉应采用酶制剂分析专用淀粉。

A.2.4.6 磷酸缓冲液(pH 6.0):称取45.23 g磷酸氢二钠(Na2HPO4·12H2O)和8.07g柠檬酸(C6H8O7·H2O),用水溶解并定容至1000 mL。用pH计校正后使用。 A.2.4.7 盐酸溶液c(HCl)=0.1 mol/L。 A.2.5 仪器和设备

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除实验室常规仪器外还有: A.2.5.1 分光光度计。

A.2.5.2 恒温水浴:精度±0.1 ℃。 A.2.5.3 自动移液器。

A.2.5.4 试管:25 mm×200 mm。 A.2.5.5 秒表。 A.2.6 分析步骤

A.2.6.1 待测酶液的制备

称取试样1 g~2 g(精确至0.0001 g)或准确吸取1.00 mL,用少量磷酸缓冲液充分溶解,将上清液小心倾入容量瓶中,若有剩余残渣,再加少量磷酸缓冲液充分研磨,最终样品全部移入容量瓶中,用磷酸缓冲液定容至刻度,摇匀。用四层纱布过滤,滤液待用。

注:1.待测中温α-淀粉酶酶液酶活力控制酶浓度在3.4 U/mL~4.5 U/mL范围内,待测耐高温α-淀粉酶活力控制酶浓度在60 U/mL~65 U/mL范围内。 A.2.6.2 测定

——吸取20.0 mL可溶性淀粉溶液于试管(A.2.5.4)中,加入磷酸缓冲液5.00 mL,摇匀后,置于60 ℃±0.2 ℃(耐高温α-淀粉酶制剂置于70 ℃± 0.2℃)恒温水浴中预热8 min。 ——加入1.00 mL稀释好的待测酶液 ,立即计时,摇匀,准确反应5 min。

——立即用自动移液器吸取1.00 mL反应液,加到预先盛有0.5 mL盐酸溶液 和5.00 mL稀碘液的试管中,摇匀,并以0.5 mL盐酸溶液和5.00 mL稀碘液为空白,于660 nm波长下,用10 mm比色皿迅速测定其吸光度(A)。根据吸光度查表附录B,求得测试酶液的浓度。 A.2.6.3 结果计算

A.2.6.3.1 中温α-淀粉酶制剂的酶活力

中温α-淀粉酶制剂的酶活力以 U/mL或 U/g计,按公式(A.1)计算:

X1?c?n …………………………………(A.1)

式中:

c——测试酶样浓度,单位为U/mL或U/g; n——样品的稀释倍数。

所得结果表示至整数。

试验结果以平行测定结果的算术平均值为准。在重复性条件下获得的两次独立测定结果的相对误差不得超过5 %。

A.2.6.3.2 耐高温α-淀粉酶制剂的酶活力

耐高温α-淀粉酶制剂的酶活力以 U/mL或 U/g计,按公式(A.2)计算:

X2?c?n?16.67 …………………………………(A.2)

式中:

c——测试酶样的浓度,单位为U/mL或U/g; n——样品的稀释倍数;

16.67——根据酶活力定义计算的换算系数。 所得结果表示至整数。

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试验结果以平行测定结果的算术平均值为准。在重复性条件下获得的两次独立测定结果的相对误差不得超过5 %。

A.3 葡糖淀粉酶(淀粉葡糖苷酶)活力的测定 A.3.1 葡糖淀粉酶(淀粉葡糖苷酶)

以淀粉为底物,在一定条件下从淀粉的非还原性末端开始依次水解α-1,4葡萄糖苷键产生葡萄糖的淀粉葡萄糖苷酶。

A.3.2 葡糖淀粉酶(淀粉葡糖苷酶)活力

L mL酶液或1 g酶粉在40 ℃、pH 4.6的条件下,1 h水解可溶性淀粉产生1 mg葡萄糖,即为一个酶活力单位,以U/mL(或U/g)表示。 A.3.3 试剂和材料

A.3.3.1 0.05 mol/L乙酸—乙酸钠缓冲溶液(pH 4.6) :称取乙酸钠(CH3COONa·3H2O) 6.7 g,吸取冰乙酸2.6 mL,用水溶解并定容至1000 mL。上述缓冲溶液的pH,应使用酸度计加以校正。 A.3.3.2 0.05 mol/L硫代硫酸钠标准滴定溶液。 A.3.3.3 0.1 mol/L碘标准溶液。 A.3.3.4 0.1 mol/L氢氧化钠溶液。

A.3.3.5 2 mol/L硫酸溶液:吸取分析纯浓硫酸(比重1.84) 5.6 mL缓缓加入适量水中,冷却后,用水定容至100 mL,摇匀。

A.3.3.6 200 g/L氢氧化钠溶液:称取氢氧化钠20g,用水溶解,并定容至100 mL。

A.3.3.7 20 g/L可溶性淀粉溶液:称取可溶性淀粉 (2±0.001) g,然后用少量水调匀,缓缓倾入已沸腾的水中,煮沸、搅拌直至透明,冷却,用水定容至100 mL。此溶液需当天配制。

注:可溶性淀粉应采用酶制剂分析专用淀粉。

A.3.4 仪器和设备

A.3.4.1 分析天平:精度0.2 mg 。 A.3.4.2 酸度计:精度0.01 pH 。 A.3.4.3 分析天平:精度0.2 mg 。 A.3.4.4 恒温水浴:40 ℃土0.1 ℃。 A.3.4.5 连续多档分配器 (移液枪) 。 A.3.4.6 磁力搅拌器 。 A.3.5 测定程序

A.3.5.1 待测酶液的制备

——液体酶:使用连续多档分配器准确吸取适量酶样,移入容量瓶中,用缓冲溶液稀释至刻度,充分摇匀,待测。

——固体酶:用50 mL小烧杯准确称取适量酶样,精确至1mg,用少量乙酸—乙酸钠缓冲溶液溶解,并用玻璃棒仔细捣研,将上层清液小心倾入适当的容量瓶中,在沉渣中再加入少量缓冲溶液,如此反复捣研3次~4次,取上清液,最后全部移入容量瓶中, 用缓冲溶液定容,磁力搅拌30 min以充分混匀,取上清液测定。

注:1. 制备待测酶液时, 样液浓度应控制在滴定空白和样品时消耗0.05 mol/L硫代硫酸钠标准滴定溶液的差值在

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