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western_blot超详细步骤

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2、 加400 μl单去污剂裂解液裂(含PMSF)于匀浆器中,进行匀浆。然后置于冰

上。

3、 几分钟后再碾一会儿再置于冰上,要重复碾几次使组织尽量碾碎。

4、 裂解30 min后,即可用移液器将裂解液移至1.5ml离心管中,然后在4℃下

12000rpm离心5min,取上清分装于0.5ml离心管中并置于-20℃保存。

(3) 加药物处理的贴壁细胞总蛋白的提取:

由于受药物的影响,一些细胞脱落下来,所以除按(一)操作外还应收集培养液中的细胞。以下是培养液中细胞总蛋白的提取:

1、 将培养液倒至15ml离心管中,于2500rpm离心5min。

2、 弃上清,加入4ml PBS并用枪轻轻吹打洗涤,然后2500rpm离心5min。弃上

清后用PBS重复洗涤一次。

3、 用枪洗干上清后,加100 μl裂解液(含PMSF)冰上裂解30min,裂解过程中

要经常弹一弹以使细胞充分裂解。

4、 将裂解液与培养瓶中裂解液混在一起4℃、12000rpm离心5min,取上清分装

于0.5ml离心管中并置于-20℃保存。

(二) 蛋白含量的测定

(1) 制作标准曲线

1、 从-20℃取出1mg/ml BSA,室温融化后,备用。

2、 取18个1.5ml离心管,3个一组,分别标记为0μg,2.5μg,5.0μg ,10.0μg ,

20.0μg ,40.0μg。

3、 按下表在各管中加入各种试剂。

1mg/ml BSA 0.15mol/L NaCl G250考马斯亮蓝溶液

0μg 2.5μg 5.0μg 10.0μg 20.0μg 40.0μg - 2.5μl 5.0μl 10.0μl 20.0μl 40.0μl 100μl 97.5μl 95.0μl 90.0μl 80.0μl 60.0μl

1ml 1ml 1ml 1ml 1ml 1ml

4、 混匀后,室温放置2min。在生物分光光度计(Bio-Photometer,Eppentoff)

上比色分析。

5、

(2) 检测样品蛋白含量

1、 取足量的1.5ml离心管,每管加入4℃储存的考马斯亮蓝溶液1ml。室温放置

30min后即可用于测蛋白。

2、 取一管考马斯亮蓝加0.15mol/L NaCl溶液100 μl,混匀放置2分钟可做为空白

样品,将空白倒入比色杯中在做好标准曲线的程序下按blank测空白样品。 3、 弃空白样品,用无水乙醇清洗比色杯2次(每次0.5ml),再用无菌水洗一次。 4、 取一管考马斯亮蓝加95 μl 0.15mol/L NaCl NaCl溶液和5μl待测蛋白样品,混

匀后静置2min,倒入扣干的比色杯中按sample键测样品。

注意:每测一个样品都要将比色杯用无水乙醇洗2次,无菌水洗一次。可同时混合好多个样品再一起测,这样对测定大量的蛋白样品可节省很多时间。测得的结果是5 μl样品含的蛋白量。

(三) SDS-PAGE电泳

(1) 清洗玻璃板:

一只手扣紧玻璃板,另一只手蘸点洗衣粉轻轻擦洗。两面都擦洗过后用自来水冲,再

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用蒸馏水冲洗干净后立在筐里晾干。 (2) 灌胶与上样

1、 玻璃板对齐后放入夹中卡紧。然后垂直卡在架子上准备灌胶。(操作时要

使两玻璃对齐,以免漏胶。)

2、 按前面方法配10%分离胶,加入TEMED后立即摇匀即可灌胶。灌胶时,

可用10ml枪吸取5ml胶沿玻璃放出,待胶面升到绿带中间线高度时即可。然后胶上加一层水,液封后的胶凝的更快。(灌胶时开始可快一些,胶面快到所需高度时要放慢速度。操作时胶一定要沿玻璃板流下,这样胶中才不会有气泡。加水液封时要很慢,否则胶会被冲变型。)

3、 当水和胶之间有一条折射线时,说明胶已凝了。再等3min使胶充分凝固

就可倒去胶上层水并用吸水纸将水吸干。

4、 按前面方法配4%的浓缩胶,加入TEMED后立即摇匀即可灌胶。将剩余空

间灌满浓缩胶然后将梳子插入浓缩胶中。灌胶时也要使胶沿玻璃板流下以免胶中有气泡产生。插梳子时要使梳子保持水平。由于胶凝固时体积会收缩减小,从而使加样孔的上样体积减小,所以在浓缩胶凝固的过程中要经常在两边补胶。待到浓缩胶凝固后,两手分别捏住梳子的两边竖直向上轻轻将其拔出。

5、 用水冲洗一下浓缩胶,将其放入电泳槽中。(小玻璃板面向内,大玻璃板

面向外。若只跑一块胶,那槽另一边要垫一块塑料板且有字的一面面向外。)

6、 测完蛋白含量后,计算含50μg蛋白的溶液体积即为上样量。取出上样样

品至0.5ml离心管中,加入5×SDS 上样缓冲液至终浓度为1×。(上样总体积一般不超过15μl,加样孔的最大限度可加20μl样品。)上样前要将样品于沸水中煮5min使蛋白变性。 7、 加足够的电泳液后开始准备上样。(电泳液至少要漫过内测的小玻璃板。)

用微量进样器贴壁吸取样品,将样品吸出不要吸进气泡。将加样器针头插至加样孔中缓慢加入样品。(加样太快可使样品冲出加样孔,若有气泡也可能使样品溢出。加入下一个样品时,进样器需在外槽电泳缓冲液中洗涤3次,以免交叉污染。

(3) 电泳

电泳时间一般4~5 h,电压为40V较好,也可用60V。电泳至溴酚兰刚跑出即可终止电泳,进行转膜。 (四) 转膜

(1) 转一张膜需准备6张7.0~8.3cm的滤纸和1张7.3~8.6cm的硝酸纤维素膜。切

滤纸和膜时一定要戴手套,因为手上的蛋白会污染膜。将切好的硝酸纤维素膜置于水上浸2 h才可使用。(用镊子捏住膜的一边轻轻置于有超纯水的平皿里,要使膜浮于水上,只有下层才与水接触。这样由于毛细管作用可使整个膜浸湿。若膜沉入水里,膜与水之间形成一层空气膜,这样会阻止膜吸水。

(2) 在加有转移液的搪瓷盘里放入转膜用的夹子、两块海绵垫、一支玻棒、滤纸和

浸过的膜。

(3) 将夹子打开使黑的一面保持水平。在上面垫一张海绵垫,用玻棒来回擀几遍以

擀走里面的气泡。(一手擀另一手要压住垫子使其不能随便移动。)在垫子上垫三层滤纸(可三张纸先叠在一起在垫于垫子上),一手固定滤纸一手用玻棒擀去其中的气泡。

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(4) 要先将玻璃板撬掉才可剥胶,撬的时候动作要轻,要在两个边上轻轻的反复撬。

撬一会儿玻璃板便开始松动,直到撬去玻板。(撬时一定要小心,玻板很易裂。)除去小玻璃板后,将浓缩胶轻轻刮去(浓缩胶影响操作),要避免把分离胶刮破。小心剥下分离胶盖于滤纸上,用手调整使其与滤纸对齐,轻轻用玻棒擀去气泡。将膜盖于胶上,要盖满整个胶(膜盖下后不可再移动)并除气泡。在膜上盖3张滤纸并除去气泡。最后盖上另一个海绵垫,擀几下就可合起夹子。整个操作在转移液中进行,要不断的擀去气泡。膜两边的滤纸不能相互接触,接触后会发生短路。(转移液含甲醇,操作时要戴手套,实验室要开门以使空气流通。)

(5) 将夹子放入转移槽槽中,要使夹的黑面对槽的黑面,夹的白面对槽的红面。电

转移时会产热,在槽的一边放一块冰来降温。一般用60V转移2 h或40V转移3 h。

(6) 转完后将膜用1×丽春红染液染5min(于脱色摇床上摇)。然后用水冲洗掉没染

上的染液就可看到膜上的蛋白。 将膜晾干备用。

(五) 免疫反应

(1) 将膜用TBS从下向上浸湿后,移至含有封闭液的平皿中,室温下脱色摇床上摇

动封闭1h。

(2) 将一抗用TBST稀释至适当浓度(在1.5ml离心管中);撕下适当大小的一块儿

保鲜膜铺于实验台面上,四角用水浸湿以使保鲜膜保持平整;将抗体溶液加到保鲜膜上;从封闭液中取出膜,用滤纸吸去残留液后,将膜蛋白面朝下放于抗体液面上,掀动膜四角以赶出残留气泡;室温下孵育1~2h后,用TBST在室温下脱色摇床上洗两次,每次10min;再用TBS洗一次,10min。

(3) 同上方法准备二抗稀释液并与膜接触,室温下孵育1~2h后,用TBST在室温

下脱色摇床上洗两次,每次10min;再用TBS洗一次,10min,进行化学发光反应。

(六) 化学发光,显影,定影

(1) 将A和B两种试剂在保鲜膜上等体积混合;1min后,将膜蛋白面朝下与此混

合液充分接触;1min后,将膜移至另一保鲜膜上,去尽残液,包好,放入X-光片夹中。

(2) 在暗室中,将1×显影液和定影液分别到入塑料盘中;在红灯下取出X-光片,

用切纸刀剪裁适当大小(比膜的长和宽均需大1cm);打开X-光片夹,把X-光片放在膜上,一旦放上,便不能移动,关上X-光片夹,开始计时;根据信号的强弱适当调整曝光时间,一般为1min或5min,也可选择不同时间多次压片,以达最佳效果;曝光完成后,打开X-光片夹,取出X-光片,迅速浸入显影液中显影,待出现明显条带后,即刻终止显影。显影时间一般为1~2min(20~25℃),温度过低时(低于16℃)需适当延长显影时间;显影结束后,马上把X-光片浸入定影液中,定影时间一般为5~10min,以胶片透明为止;用自来水冲去残留的定影液后,室温下晾干。

应注意的是:显影和定影需移动胶片时,尽量拿胶片一角,手指甲不要划伤胶片,否则会对结果产生影响。

(七) 凝胶图象分析

将胶片进行扫描或拍照,用凝胶图象处理系统分析目标带的分子量和净光密度值。

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Western blot analysis-1 Cells were cultured in 199 medium with 10% fetal bovine serum. After digestion with 0.25%trypsin and 0.2íTA, the cells were collected and were washed three times with ice-cold PBS, then were lysed in buffer(50mM Tris-HCl, pH8.0,150mM NaCl, 100μg/ml PMSF, 1%TritonX-100) for 30 min at ice. After removal of cell debris by centrifugation(12,000g,5 min), the protein concentration of lysates was meatured by Bradford method. 50μg proteins of different groups boiled for 5 min in sample buffer and were separated in 10% SDS-PAGE and transferred onto nitrocellulose membrane (Bio-Rad). Nonspecific reactivity was blocked by incubation overnight at 4℃ in buffer(10mM Tris-HCl, pH7.5,150mM NaCl, 2%Tween-20, 4% bovine sreum albumin).The membrane was then incubated with primary antibody. The secondary antibody was used to detected bound primary antibody. Reactive protein was detected by ECL chemiluminescence system (Amersham pharmacia biotech).

Western blot analysis-2 The protein expression ezrin was detected by Western blot method. Confluent 150 cm2 flasks of cells were washed three times with ice-cold PBS, then lysed in buffer(50mM Tris-HCl, pH8.0,150mM NaCl, 100μg/ml PMSF, 1%TritonX-100) for 30 min at ice. After removal of cell debris by centrifugation(12,000g,5 min), 50μg of each lysate sample was boiled for 5 min in sample buffer and were separated by 10% SDS-PAGE and transferred onto nitrocellulose membrane (Pall Corporation). Nonspecific reactivity was blocked in 5% nonfat dry milk in TBST(10mM Tris-HCl, pH7.5,150mM NaCl, 0.05%Tween-20) for 1h at room temperature. The membrane was then incubated with monoclonal antibody of mouse anti human ezrin p81(Maixin-Bio) followed by reaction with anti-mouse IgG-HRP antibody. Reactive protein was detected by ECL chemiluminescence system (Santa Cruz).

ezrin蛋白表达通过Western blot进行检测。已达融合生长的单层细胞用冷PBS洗三次后,加入裂解液(50mM Tris-HCl, pH8.0,150mM NaCl, 100μg/ml PMSF, 1%TritonX-100)冰上裂解30min,12,000g,5 min离心去除细胞碎片后,取50μg样品与上样缓冲液混合,煮沸5min,进行10% SDS-PAGE电泳,转硝酸纤维素膜(Pall Corporation)。将膜在含5%脱脂奶粉的TBST(10mM Tris-HCl, pH7.5,150mM NaCl, 0.05%Tween-20)中室温下封闭1h,随后加入鼠抗人ezrin一抗(Maixin-Bio),抗鼠IgG-HRP二抗,ECL化学发光试剂检测(Santa Cruz)。

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