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HPLC(液相色谱)常识及疑难详解(附实际操作图解)

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1 液相色谱基础知识 1.1 液相色谱名词术语

Mobile phase:流动相,在色谱柱中存在着相对运动的两相,一相为固定相,一相为流动相。流动相是指在色谱过程中载带样品(组分)向前移动的那一相。

Stationary phase:固定相,柱色谱或平板色谱中既起分离作用又不移动的那一相。

Gradient elution: 梯度洗脱,一个分析周期中,按一定程序不断改变流动相的浓度配比, 使一个复杂样品中的性质差异较大的组分能按各自适宜的容量因子k达到良好的分离目的。 Detection wavelength:检测波长,

retention time:保留时间,被分离样品组分从进样开始到柱后出现该组分浓度极大值时的时间 Peak:峰

Peak Base:峰基线,经流动相冲洗,柱与流动相达到平衡后,检测器测出一段时间的流出曲线。一般应平行于时间轴 Peak Height:峰高,色谱峰顶点至峰底的距离。

Peak Width:峰宽,色谱峰两侧拐点处所作切线与峰底相交两点间的距离

Peak Width at Half Height:半峰高宽 Peak Area:峰面积

Tailing Peak: 后沿较前沿平缓的不对称峰

Leading Peak:前沿较后沿平缓的不对称峰 Ghost Peak: 假峰,并非由试样所产生的峰 Baseline Drift:基线漂移 Baseline Noise:基线噪音

Band Broadening:组分在色谱柱内移动过程中谱带宽度增加的现象.

1.2 流动相 1.2.1 流动相类型

正相液相色谱流动相:一般正相色谱固定相极性大于流动相极性,采用极性固定相(如聚乙二醇、氨基与腈基键合相);流动相为相对非极性的疏水性溶剂(烷烃类如正已烷、环已烷),常加入乙醇、异丙醇、四氢呋喃、三氯甲烷等以调节组分的保留时间。常用于分离中等极性和极性较强的化合物(如酚类、胺类、羰基类及氨基酸类等),极性小的组分先出柱。

反相液相色谱流动相:一般用非极性固定相(如C18、C8);流动相为水或缓冲液,常加入甲醇、乙腈、异丙醇、丙酮、四氢呋喃等与水互溶的有机溶剂以调节保留时间。适用于分离非极性和极性较弱的化合物,极性大的组分先出柱(现在大部分液相用的是反相色谱法)。

1.2.2 流动相注意事项 1.2.2.1 pH值的选择

C18和C8使用的流动相pH值通常为2.5~7.5(2~8),太高的pH值会使硅胶溶解,太低的pH值会使键合的烷基脱落。

1.2.2.2 滤膜的使用

对于盐类等试剂,或者没有色谱纯的试剂,可以使用分析纯的,但是在使用前需要用0.45um或0.22um的滤膜过滤。盐类试剂最好现配现用。

使用滤膜时应注意:有机膜能滤水系,水系膜不能滤有机。如果流动相是有机溶剂的比例,那么就应该用有机膜过滤(但是如果是梯度进流动相的话,盐溶液可先单独用水膜过滤) 水膜:

纤维素微孔滤膜,易溶于丙酮等中等极性有机溶剂,不易燃烧,可用于空气测定之用,亦可用于乙醇或水液体过滤。 纤维素膜:

a) 醋酸纤维素膜:可过滤低分子量的醇类、水溶液、酒类、油类。 b) 硝酸纤维素膜:适用于水溶液、空气、油类、酒类过滤。不耐酸碱,溶于有机溶剂。可进行热压灭菌。

c) 醋酸纤维与硝酸纤维素混合酯膜:性质类硝酸纤维素膜。但可适用于PH值3~10范围,10%~20%的乙醇,50%的甘油,30%~50%的丙二醇等,而2%聚山梨酯80对膜有显著影响。

微孔滤膜使用前,应进行清洗处理,用蒸馏水浸泡洗净后装于滤器内,有机溶剂的过滤则用乙醇浸泡清洗。色谱样品或试剂的过滤,若是水系的,蒸馏水洗净浸泡后,再蒸馏水预过滤,若有机系过滤,最好先将本品在纯甲苯和95%以上的乙醇中分别浸泡过夜,再纯甲苯和纯乙醇预过滤,彻底洗净膜后使用。

微孔滤膜正反:

a) 各向同性,不分正反面,对额定孔径以上固体微粒能起到绝对截留的作用。

b) 有正反面,亮光强的为反面,亮光弱的为正面,膜内孔径从正面到反面逐渐递减。使用时应将正面对着待滤液,即待滤液从亮光弱的一面流入,滤净液从亮光强的一面流出,欲截留微粒相当于经历了孔径从大到小多层滤膜的阻截而不易堵塞,可显著延长使用寿命。使用时应在膜处理前认好正反面,(光线从侧面照膜可以比较出),作上记号,入水后正面将难以分辨。 有机膜尼龙(聚酰胺)微孔滤膜

材料为脂肪族尼龙,有良好的亲水性,耐适当浓度的酸碱,不仅适用于含有酸碱性的水溶液,亦适用于含有机溶剂,例醇类、烃类、醚类、酯类、酮类,苯和苯的同系物,二甲基甲酰胺,二甲基亚砜等等,是适用范围最广的微滤膜之一。有机膜入水后显著变脆,入有机溶剂强度的减少则轻些。有机能滤水系,水系不能滤有机。

1.2.2.3 有机相的选择

使用反相色谱柱可以有三种有机溶剂可以选择,甲醇、乙腈和四氢呋喃。每一种溶剂都有其独特的优点,需根据具体情况选择。

有些样品的紫外吸收很弱,所以分析时紫外检测器的波长为220nm甚至更低,但是四氢呋喃的紫外吸收比较强,所以在波长低于240nm时,就不能选择这种溶剂。尽管低浓度的甲醇在较低的波长下也可使用,但是在低于220nm时,甲醇的浓度不易控制。

选择何种溶剂还必须考虑其与样品及空气之间不发生作用,而四氢呋喃易分解,形成过氧化物,所以使用这种溶剂时须格外小心。一些研究人员发现,在四氢呋喃中加入水可以解决这个问题,但它与色谱柱平衡所需的时间比甲醇、乙腈长,而且其不愉快的气味也是一个不利因素。与四氢呋喃相比,甲醇和乙腈的最大优点是在柱压较低的条件下,流速可控制在1-2ml/min之间。

考虑到理想溶剂的特点,如粘度低、紫外吸收弱、与样品不相互作用,而且使用方便,所以首选的有机溶剂应是乙腈,当然利用甲醇作为有机溶剂的也较为常见。

1.2.2.4 水相的选择

样品为一般化合物,可以用水作为水相,然而离子化合物在药

物分析时普遍存在,而这类化合物需要控制PH值才能得到很好的分离。如流动相的PH值必须高于或低于样品的PKA1.5个单位。在分析有机酸时,当PH值低于3时,色谱柱一般还比较稳定,然而当PH值高于8时,就需要缓冲液,因为此PH值已经超出了二氧化硅的有效使用范围。宽PH值的二氧化硅柱也比较常见,但是对高PH值物质的分离,很少有这方面的报道。所以建议使用缓冲液来减少二氧化硅的流失。

考虑到样品的特性及柱子的稳定,建议在分析PH值较高的物质时应使用缓冲液,2.5mM的磷酸盐缓冲液 (PH=2.5)是非常合适的水相。如果在分析方法中使用了分光仪,那么就必须选易挥发的缓冲液,

HPLC(液相色谱)常识及疑难详解(附实际操作图解)

1液相色谱基础知识1.1液相色谱名词术语Mobilephase:流动相,在色谱柱中存在着相对运动的两相,一相为固定相,一相为流动相。流动相是指在色谱过程中载带样品(组分)向前移动的那一相。Stationaryphase:固定相,柱色谱或平板色谱中既起分离作用又不移动的那一相。Gradientelution:梯度洗脱,一个分析周期中
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