实验13 药物对离体豚鼠回肠的作用
目的 观察acetylcholine、histamine和BaCl2 等药物对离体豚鼠回肠平滑肌的作用，以atropine及chlorpheniramine两药为工具，初步分析上述三药作用原理。
材料 豚鼠；小剪刀，小镊子，培养皿，麦氏浴槽，胶管，通气钩，气泵，棉线，木槌；气泵，张力换能器，超级恒温器，PcLab生物信号采集处理系统；台氏溶液，acetylcholine chloride溶液(1:10万)，0.1% atropine sulfate溶液，histamine phosphate溶液(1:10万)(临用时新鲜配制)、chlorpheniramine溶液(1:100万)、1oCl2 溶液。
方法和步骤
1．离体肠管描记装置的准备(见图10-13-1)。
（1）麦氏浴槽中充以台氏液至固定水平面，调节超级恒温器的温度至37℃，保证麦氏浴槽内37℃±0.5℃恒温。
（2）胶管的一端接气泵出口，胶管的另一端连接通气钩。 2．PcLab参数设置：
（1）按图10-13-1连接装置。将张力换能器固定于铁支柱上，换能器输出线接微机生物信号处理系统第二通道（亦可选择其它通道），选择直流耦合方式（DC）。
（2）微机生物信号处理系统参数设置：采样间隔2ms；连续记录显示模式，压缩比100:1，第二通道放大倍数200～500、高频滤波选择“无”。
3．取豚鼠一只，用木槌击其头部处死，立即剖开腹腔，找到回盲部，然后，在离回盲部1cm处剪断，取出回肠约10cm左右一段，置于盛有充以空气的台氏液培养皿中，沿肠壁除去肠系膜，然后将回肠剪成数小段（每小段1-1.5cm），用5ml注射器吸取台氏液将肠内容物冲洗干净，换以新鲜台氏液备用。注意操作时勿牵拉肠段以免影响收缩功能。
4．取一小段肠管置于盛有台氏液的培养皿中，在其两端对角壁处，分别用缝针穿线，并打结。注意保持肠管通畅，勿使其封闭。肠管一端连线系于通气钩钩上，然后放入37℃麦氏浴槽中。用螺丝夹调节气泵出气口的胶管，通气速度以麦氏浴槽中的气泡一个个逸出为宜。再将肠管的另一端加于拉力换能器，并调节肌张力至适度(图10-13-1)。
图10-13-1 离体肠管描记装置图
观察项目
1．待离体回肠稳定10~30分钟后，记录一段正常收缩曲线后，依次于麦氏浴槽中滴加下列药物。加入一种药液后，接触2分钟，并观察收缩幅度，然后用台氏液连续冲洗二次，待基线恢复到用药前的水平，随后记录一段基线。再加入第二种药液。浴槽液体的容量每次都应一致。
2．加入1:10万acetylcholine(Ach)0.2ml(2μg)，观察并记录其收缩幅度(若肠段未达到痉挛收缩则适当增加药量)，2~3分钟后换液。
3．重复以上Ach 剂量，待收缩达最高点时，加入0.1％ atropine 0.2ml，观察结果如何。不换液，待曲线恢复至基线或基本稳定后，再加入相同浓度的Ach，并与①结果相比较。
4．加入1:10万histamine 0.3ml(3μg)，待作用明显时(1~2分钟)，迅速换液。使肠肌恢复正常。 5．加入1:10万chlorpheniramine溶液0.2ml 5分钟后(不换液)，加入同量histamine，观察其反应，并与③比较。此结果说明什么(必要时可再加chlorpheniramine的剂量重复之)？
6．加入1oCl2 溶液1ml，观察其反应，当作用达最高点，肠段持续于痉挛收缩状态时，加入
0.1%atropine溶液0.2ml(或更大剂量)，对肠肌收缩有何影响？此结果说明什么？
结果
1．记录各药物作用前后肠肌收缩曲线（包括正常对照曲线）。测量各药物作用前后肠肌的收缩张力并进行统计处理。
2．分析和探讨各药物对肠肌收缩的影响及机制。
实验13 药物对离体豚鼠回肠的作用
