（3）缺氧:将气管插管的壹侧管和装有钠石灰的广口瓶相连，广口瓶的另壹开口和盛有壹定量的空气气囊相连，此时动物呼出的CO2可被钠石灰吸收。随着呼吸的进行，气囊里的O2逐渐减少，可造成缺氧。观察血压、呼吸及尿量的变化。 （4）改变血液的酸碱度
①由耳缘静脉较快的注入3%乳酸2mL，观察H+增多时对血压、呼吸及尿量的影响。 ②由耳缘静脉较快的注入5%NaHCO36ml，观察血压、呼吸及尿量的变化。 （5）夹闭颈总动脉:待血压稳定后，用动脉夹夹住左侧颈总动脉，观察血压、呼吸及尿量的变化。出现明显变化后去除夹闭。
（6）电刺激迷走神经和减压神经:将保护电极和刺激输出线（通道）连接，待血压恢复后，分别将右侧迷走神经、减压神经轻轻搭在保护电极上，选择刺激强度6V，刺激频率40～50次.S-1,刺激15～20s，观察血压、呼吸及尿量的变化。
（7）静脉注射生理盐水:由耳缘静脉快速注射38℃生理盐水30mL，观察血压、呼吸及尿量的变化。
（8）静脉注射利尿药:待血压恢复后，由耳缘静脉注射速尿0.5mL，观察血压、呼吸及尿量的变化。
（9）静脉注射去甲肾上腺素（NE）:待血压恢复后，由耳缘静脉注射1：10000乙酰胆碱0.15mL.kg-1,观察血压、呼吸及尿量的变化。
（10）静脉注射葡萄糖:待血压恢复后，由耳缘静脉注射20%葡萄糖5mL，观察血压、呼吸及尿量的变化。
（11）静脉注射乙酰胆碱（ACh）:待血压恢复后，由耳缘静脉注射1：10000乙酰胆碱0.15mL.kg-1,观察血压、呼吸及尿量的变化。
（12）动脉放血:待血压恢复后，调节三通管使动脉插管和50mL注射器（内有肝素）相通，放血50mL（放血后立即用肝素生理盐水将插管内血液冲回兔体内，以防凝血），观察血压、呼吸及尿量的变化。 5．教学方式
以实验为主，课堂讲授为辅的教学方法，同时配合录象教学。 6．考核要求
通过观察动物在整体情况下，各种理化刺激引起循环、呼吸、泌尿等功能的适应性改变，加深对机体在整体状态下的整合机制的认识。 7．实验报告要求
实验 因素 1.实验前 2.吸入CO2 3.缺氧 4.血液H+增加 血液HCO3-增加 5.夹闭颈总动脉 6.刺激迷走神经 刺激减压神经 7.静脉注射生理盐水 8.静脉注射利尿剂 9.静脉注射NE 10.静脉Ach 11.静脉注射葡萄糖 12.动脉放血
血压／mmHg 前后升降
呼吸频率/（次·min-1）幅度 前后增减
尿量/（滴·min-1） 前后增减
不同抗心肌损伤注射液对蟾蜍实验性急性心肌损伤的影响
1、实验目的
本实验通过蟾蜍实验性急性心肌损伤模型，观察①和②注射液对实验性急性心肌损伤的
保护作用。 2材料和方法
2．1实验材料：蟾蜍，共30只，体重在(40±5)g，①、②注射液、犬眠宝，BL-420生物信号记录系统。
2．2药物：盐酸维拉帕米、去乙酰毛苷注射液、盐酸异丙肾上腺素、盐酸多巴胺、重酒石酸去甲肾上腺素、盐酸利多卡因
2．3实验方法：心肌损伤模型：20％氨基甲酸乙酯，0.5ml／kg，皮下淋巴囊注射麻醉，动物麻醉后背位固定于蛙板上，开胸、剪开心包膜，连接记录电极至生物信号系统，分别描记实验前Ⅱ导联心电图作为对照，然后轻轻托起心尖部，用小剪刀斜向剪壹长约1mm的切口(剪时切勿穿破心室壁)，损伤后分别记录1，3，5minII导联心电图，观察sT段和T波电压变化。
2．4给药给药组于蟾蜍下颌淋巴囊分别给予①注射液(0.5ml／kg)，记录正常心电图后立即按上述方法分别记录1，3，5rainⅡ导联心电图，观察，ST段和T波电压变化。10min后注射②再分别记录1，3，5minⅡ导联心电图。 2．5统计学方法 3、结果
3.1：注射液的功能： 3.2：结果分析：
六、实验教材及主要参考资料
杨秀平主编，《动物生理学实验》高等教育出版社，2004年
(农业畜牧行业)查看动物生理学实验教学大纲附湖南农业大学实验精编
