原位杂交实验原理与方法
一、目的 本实验的目的是学会原位杂交的使用方法。了解各种原位杂交的基本原理和优缺点。 二、原理
原位杂交组化（简称原位杂交，
in situ hybridization histochemistry ; ISHH）属于分子
杂交的一种， 是一种应用标记探针与组织细胞中的待测核酸杂交， 再应用标记物相关的检测 系统，在核酸原有的位置将其显示出来的一种检测技术。 原位杂交的本质就是在一定的温度 和离子浓度下， 使具有特异序列的单链探针通过碱基互补规则与组织细胞内待测的核酸复性 结合而使得组织细胞中的特异性核酸得到定位， 并通过探针上所标记的检测系统将其在核酸 的原有位置上显示出来。 当然杂交分子的形成并不要求两条单链的碱基顺序完全互补，
所以不同来源的核酸单链只要
彼此之间有一定程度的互补顺序（即某种程度的同源性）就可以形成杂交双链。 探针的种类按所带标记物可分为同位素标记探针和非同位素标记探针两大类。 放射性标记法是通过酶促反应将标记的基因掺入
目前， 大多数
DNA中，常用的同位素标记物有
背底较为清晰等优点，
3H、35S、
1251和32P。同位素标记物虽然有灵敏性高， 但是由于放射性同位素
对人和环境均会造成伤害， 近来有被非同位素取代的趋势。 非同位素标记物中目前最常用的 有生物素、地高辛和荧光素三种。
探针的种类按核酸性质不同又可分为
DNA探针、cDNA探针、cRNA探针和合成寡核苷酸探针。
cDNA探针又可分为双链 cDNA探针和单链cDNA探针。 原位杂交又可分为菌落原位杂交和组织原位杂交。
菌落原位杂交（ Colony in situ hybridization ） 菌落原位杂交是将细菌从培养平板转 移到硝酸纤维素滤膜上，然后将滤膜上的菌落裂菌以释出
DNA将NDA烘干固定于膜上与 32P
标记的探针杂交，放射自显影检测菌落杂交信号，并与平板上的菌落对位。
组织原位杂交（ Tissue in situ hybridization ） 组织原位杂交简称原位杂交，指组织 或细胞的原位杂交，它与菌落的原位杂交不同。菌落原位杂交需裂解细菌释出
行杂交。而原位杂交是经适当处理后，使细胞通透性增加，让探针进入细胞内与 杂交。
（一）探针的选择 根据不同的杂交实验要求，应选择不同的核酸探针。在大多数情况下，可以选择克隆
的
或cDNA双链探针。但是在有些情况下，必须选用其它类型的探针如寡核苷酸探针和 针。例如， 在检测靶序列上的单个碱基改变时应选用寡核苷酸探针，
DNA然后进
DNA或 RNA
DNA RNA探
在检测单链靶序列时应
选用与其互补的 DNA单链探针（通过克隆人 M13噬菌体DNA获得）或RNA探针，寡核苷酸探 针也可。长的双链 DNA探针特异性较强，适宜检测复杂的靶核苷酸序列和病原体
，但不适
宜于组织原位杂交， 因为它不易透过细胞膜进入胞内或核内。 在这种情况下， 寡核苷酸探针 和短的PCF标记探针（80?150bp）具有较大的优越性。 在选用探针时经常会受到可利用探针种类的限制。
如在建立DNA文库时，手头没有筛选特定
基因的克隆探针， 这时就可用寡核苷酸探针来代替。 但必须首先纯化该基因的编码蛋白， 并 测定 6 个以上的末端氨基酸序列， 通过反推的核苷酸序列合成一套寡核苷酸探针。 如果已有 其它动物的同种基因克隆，因为人类和动物间在同一基因的核苷酸顺序上存在较高的同源 性，因此可利用已鉴定的动物基因作探针来筛选人类基因克隆。
对于基因核苷酸序列背景清
楚而无法获得克隆探针时，可采用PCR方法扩增某段基因序列，并克隆人合适的质粒载体中， 即可得到自己的探针。这种方法十分简便，无论基因组 地获得，而且，可以建立
DNA探针还是cDNA探针都可以容易
PCR勺基因检测方法，与探针杂交方法可作对比，可谓一举两得。
（二） 探针的标记方法
在选择探针类型的同时， 还需要选择标记方法。 探针的标记方法很多， 选择什么标记方法主 要视个人的习惯和可利用条件而定。 但在选择标记方法时， 还应考虑实验的要求， 如灵敏度 和显示方法等。 一般认为放射性探针比非放射性探针的灵敏度高。 放射性探针的实际灵敏度 不依赖于所采用的标记方法，如随机引物延伸法往往得到比缺口平移法更高的比活性
。在
检测单拷贝基因序列时， 应选用标记效率高、 显示灵敏的探针标记方法。 在对灵敏要求不高 时，可采用保存时间长的生物素探针技术和比较稳定的碱性磷酸酶显示系统。
（三） 探针的浓度 总的来说，随探针浓度增加，杂交率也增加。另外，在较窄的范围内，随探针浓度增加，敏
感性增加。依我们的经验，要获得较满意的敏感性，
膜杂交中32P标记探针与非放射性标记
探针的用量分别为 5?10 ng/ml和25?1000ng/ml ,而原位杂交中，无论应用何种标记探针， 其用量均为
0.5?5.0卩g/ml。探针的任何内在物理特性均不影响其使用浓度，但受不同类 型标记物的固相支持物的非特
异结合特性的影响。
（四） 杂交率 在探针过量的条件下，杂交率主要依赖于探针长度（复杂度）和探针浓度。 （五） 杂交最适温度
杂交技术最重要的因素之一是选择最适的杂交反应温度。若反应温度低于 基顺序高度同源的互补链可形成稳定的双链，错配对减少。若反应温度再低（
Tm10?15C，碱
Tm-30C）,
虽然互补链之间也可形成稳定的双链， 但互补碱基配对减少， 错配对增多、 氢键结合的更弱。 如两个同源性在 50%￡右或更低些的 DNA调整杂交温度可使它们之间的杂交率变化
10倍,
因此在实验前必须首先确定杂交温度。 通常有三种温度可供试验， 即最适复性温度、 苛刻复 性温度及非苛刻复性温度。温度的选择及温度对杂交的影响见表
18-3。最适复性温度
） : Tor =Tm — 25C
（Optimunm renaturation temperature, TOR
苛刻复性温度：Ts = Tm -
（10或15C）
非苛刻复性温度：Tns =Tm - （30或35 C）
（六）杂交的严格性 影响杂交体稳定性的因素决定着杂交条件的严格性。一般认为在低于杂交体 ?（七）杂交反
应时间 在条件都得到满足的情况下，杂交的成败就取决于保温时间。时间短了，杂交反应不完成； 时间长了也无益，会引起非特异结合增多。
一般杂交反应要进行 20h左右。1966年Britten
和 Kohne 推荐用 Cot =值来计算杂交反应时间。 Cot 值实际上是杂交液中单链起始浓度 （ Co）
和 反应时间（t）的乘积。实验表明 Cot =100时，杂交反应基本完成。 Cot=0，基本上没有
杂交。例如在液相杂交中 未标记的DNA400卩g/ml （按单股DNA每微克 紫外吸收值为0.024 计算，总的吸收值为9.6 ）,如果反应时间为 21h,那么对于未标记的 DNA来说，Cot =9.6/21 =100.8,杂交完成了。对标记 DN A （浓度为0.1卩g/ml ）来说Cot值为0.05，这就充分排 除了标记DNA的自我复性。Tm值25C时杂交最佳，所以首先要根据公式（
4）计算杂交体
（八）
Tm 值。由此式可见， 通过调节 盐浓度、甲酰胺浓度和杂交温度来控制所需的严格性。
杂交促进剂 惰性多聚体可用来促进 250个碱基以上的探针的杂交率。 对单链探针可增加 3倍，而对双链 探针、随机剪切或随机引物标记的探针可增加高达 100倍。 而短探针不需用促进剂， 因其复
杂度低和分子量小 ，短探针本身的杂交率就高 。 硫酸葡聚糖是一种广泛用于较长双链探针杂交的促进剂。这是一种多聚胺，平均分子量为 500 000。另一种常见的促进剂是聚乙二醇（ PEG , PEG分子量小（6000?
8000）、粘度低、
价格低廉，但它不能完成取代硫酸葡聚糖。在某些条件下
5%?10%硫酸葡聚糖效果较好，若
用5%?10%PEGW可产生很高的本底。因此，使用促进剂时有必要优化条件。另一种多聚体 促进剂是聚丙烯
酸，用其钠盐，浓度为 粘度低（ MW=90 000）。
2%? 4%。与硫酸葡聚糖相比，其优点是价格低廉，
小分子化学试剂酚和硫氰酸胍也能促进杂交， 它们可能是通过增加水的疏水性和降低双链和 单链DNA间的能量差异而发挥作用。
酚作为杂交促进剂，只能在低DNA浓度的液相杂交中观
察到， 该方法曾被称为酚乳化复性技术， 该法不能用于固相杂交， 因酚可引起核酸与膜的非 特异吸附作用，即使在液相杂交中的应用也是有限的。而硫氰酸胍可通过降低双链
DNA的
Tm值而起作用。此外，该分子还可以促进 RNA的杂交，有裂解细胞而抑制 RNase的作用。
总之，硫酸葡聚糖和聚乙二醇因能用于固相杂交是目前最常用的杂交促进剂。
（七） 杂交反应时间 在条件都得到满足的情况下，杂交的成败就取决于保温时间。时间短了，杂交反
应不完成；
时间长了也无益，会引起非特异结合增多。
一般杂交反应要进行 20h左右。1966年Britten
（ Co）
和 Kohne 推荐用 Cot =值来计算杂交反应时间。 Cot 值实际上是杂交液中单链起始浓度 和 反应时间（t）的乘积。实验表明 Cot =100时，杂交反应基本完成。 杂交。例如在液相杂交中未标记的
Cot=0，基本上没有
DNA400卩g/ml （按单股DNA每微克紫外吸收值为0.024
计算，总的吸收值为9.6 ）,如果反应时间为 21h,那么对于未标记的 DNA来说，Cot =9.6/21 =100.8,杂交完成了。对标记 DN A （浓度为0.1卩g/ml ）来说Cot值为0.05，这就充分排 除了标记DNA的自我复性。
Tm值25C时杂交最佳，所以首先要根据公式（
Tm 值。由此式可见，通过调节 盐浓度、甲酰胺浓度和杂交温度来控制所需的严格性。
（八） 杂交促进剂
4）计算杂交体
惰性多聚体可用来促进 250 个碱基以上的探针的杂交率。 对单链探针可增加 3 倍，而对双链 探针、 随机剪切或随机引物标记的探针可增加高达 100倍。 而短探针不需用促进剂， 因其复 杂度低和分子量小 ，短探针本身的杂交率就高 。硫酸葡聚糖是一种广泛用于较长双链探针 杂交的促进剂。这是一种多聚胺，平均分子量为
500 000。另一种常见的促进剂是聚乙二醇
（PEG , PEG分子量小（6000?8000）、粘度低、价格低廉，但它不能完成取代硫酸葡聚 糖。在某些条件下
5%- 10%硫酸葡聚糖效果较好，若用 5%- 10%PEGW可产生很高的本底。
因此， 使用促进剂时有必要优化条件。另一种多聚体促进剂是聚丙烯酸，用其钠盐，浓度为 2%? 4%。与硫酸葡聚糖相比，其优点是价格低廉，粘度低（
MW=90 000）。小分子化学试剂
DNA间的能
该方法曾
酚和硫氰酸胍也能促进杂交，它们可能是通过增加水的疏水性和降低双链和单链 量差异而发挥作用。 酚作为杂交促进剂，
只能在低DNA浓度的液相杂交中观察到，
被称为酚乳化复性技术，该法不能用于固相杂交，因酚可引起核酸与膜的非特异吸附作用， 即使在液相杂交中的应用也是有限的。而硫氰酸胍可通过降低双链
DNA的 Tm值而起作用。
此外，该分子还可以促进 RNA的杂交，有裂解细胞而抑制 RNase的作用。总之，硫酸葡聚糖 和聚乙二醇因能用于固相杂交是目前最常用的杂交促进剂。
三、 主要器材
医用微波炉，恒温水浴箱、湿盒、
四、 试剂 （二） 试剂 :
? 2.5ml/L 的醋酸－－ 2.5ml/L 醋酸酐 : 三乙醇胺 13.2ml 氯化钠 5g 浓盐酸 4ml 醋酸酐(用前加) 2.5ml ； ?
PNP笔等。
20X SSC( pH7.0):
氯化钠 175.3g 枸橼酸钠 88.2g 双蒸水定容至 1L ； ?
100X Denhardt ‘s:
Ficoll 1g PVP 1g BSA 1g ddH2O 定容至 50ml；
?
杂交液：( 50ml ) 用量 终浓度 100%去离子甲酰胺 25ml 50% 100%葡聚糖硫酸脂 5mg 10%
100X Denhard‘s 0.5ml 1 1Mtris-HCL (PH8.0) 0.5ml 10Mm 5M NaCl 3ml 0.3M 0.5M EDTA (PH8.0) 0.1ml 1mM 10mg/ml 变性鱼精 DNA 0.5ml 100ug/ml ddH20定容至25ml
?
0.1M 甘氨酸 /PBS: 甘氨酸 7.5g Na2HP04 30.8g NaH2P04 2.8g
NaCl 8.5g
溶于800mlddH20,定容至1000ml，高压，室温储存; ?TSM1( 1000ml)：
1MTris-HCL(PH8.0) 100ml
5M NaCl 20ml 1M MgCl2 10ml ddH20定容至 1000ml;
?TSM2( 1000ml)： 1MTris-HCL(PH8.0) 100ml 5M NaCl 20ml
1M MgCl2 50ml ddH20定容至 1000ml;
?
抗体稀释液： 100ml BSA 1.0g
Tris X-100 0.4ml
叠氮钠 0.4g
0.05M PBS （ PH7.2）调至 100ml;
?
0.05M PBS （ PH7.2） ：1000ml
Na2HPO4 15.4g NaH2PO4 1.4g
NaCl 4.25g ?去内源性酶液（ 40ml）： 储存液 用量 终浓度
10%甲醛 4.0ml 0.3 —0.5% 冰醋酸 10.0ml 25.0% 加 0.05MPBS至 40ml
?
0.4% Triton-X 100
五、操作
（一） 脱蜡，水化：
1 、 二甲苯 10min 两次 2、 无水乙醇 3min 两次 3、 95%乙醇 3min —次 4、 75%乙醇 3min —次 5、 50%乙醇 2min —次 6、 重蒸水2min —次 7、 PBS洗涤 5min
（二） 将组织芯片放入去内源性酶液中浸泡
30min; PBS洗涤5min
（三） 0.1M 甘氨酸去游离醛基 15min ； 0.4%tritonX-100 洗 10min; （四） 用蛋白酶K与37C孵育30min , PBS振洗5min
（五） 在0.1mol/L 三乙醇胺一一0.25%乙酸酐中孵育 10min ;在2X SSC中洗5min ; （六） 滴加预杂交液42C,30min ;将RNA探针用预杂交液稀释（1ng/ u L~2ng/ u L） （七） 杂交
1、 在载玻片表面覆盖上杂交小室，
盒中过夜。
加20~50 u L的杂交液到组织芯片 TMA上，42C ~44C湿
2、 在 4X SSC 中 37C 洗涤 15min
3、 2X SSC 加入 RNA酶（大致为 10u g/ml ） 37C 中洗涤 30min , 4、 0.5 x SSC,37C洗涤 15min
（八） 封闭
1、 1%正常山羊血清孵育 30min
2、 用抗体稀释液稀释碱磷酶标记的抗地高辛抗体（
每次 5min
1: 500） 37C中孵育3h, PBS洗三次,
3、 TSM1洗; 4、 TSM2洗;
（九）显色：用 TSM2将NBT/BCIP按2: 1稀释进行显色；显微镜下掌握染色程度 （十）终止显色：用水终止
（十一）脱水，透明，封固
1、 85%乙醇脱水， 2min 2、 95%乙醇脱水 5min 3、 无水乙醇脱水 15mi n 4、 二甲苯 20min 5、 封片，镜检
原位杂交组织化学技术的基本方法
点击次数：236发布时间：2010-2-1 8:13:09
一、 核酸分子杂交技术
1961年Hall开拓了液相核酸杂交技术的研究， 其基本原理是利用核酸分子单链之间有互补
自此
的碱基顺序，通过碱基对之间非共价键的形成，出现稳定的双链区，形成杂交的双链。 以后，由于分子生物学技术的迅猛发展，
特别是70年代末到80年代初，分子克隆、质粒和
大大丰富了核酸探针的来源，
噬菌体DNA的构建成功，核酸自动合成仪的诞生， 新的核酸分 液相杂交
子杂交类型和方法不断涌现。按其作用方式可大致分为固相杂交和液相杂交两种： 是指参加反应的两条核酸链都游离在溶液中，
而固相杂交是将参加反应的一条核酸链固定在
，另一条
固体的支持物上常用的有硝酸纤维素滤膜，其它如尼龙膜、乳胶颗粒和微孔板等) 参加反应的核酸链游离在溶液中。固相杂交有菌落原位杂交(
colo ny in situ
hybridization )、斑点杂交法(Dot blot )、Southern 印迹杂交(Southern blot )、Northern 印迹杂交
(Northern blot )和组织原位杂交(Tissue in situ hybridization 杂交组织化学技术和原位杂交免疫细胞化学技术。 相杂交、液相夹心杂交和复性速率液相分子杂交等。
)，即原位
液相分子杂交技术包括吸附杂交、 发光液
原位杂交原理及具体操作
