2014-2015学年上学期
植物生理学实验科技论文
题 目 干旱胁迫对小麦生理生活指标的影响 姓 名 张蓉娜 学 号 124120249 院、 系 生命科学学院应用生物教育 专 业 12 应用生物教育A班 任课教师 李忠光(教授)
二0一四年十二月
干旱胁迫对小麦生理生化指标的影响
12应用生物教育A班 张蓉娜 124120249
摘要:干旱胁迫是影响小麦产量的重要胁迫因素,而干旱胁迫对小麦生理
生化指标有显著影响。通过对干旱胁迫下的小麦幼苗与正常小麦幼苗中的脯氨酸(Pro)、丙二醛(MDA)、过氧化氢(H2O2)、多酚氧化酶(PPO)、过氧化物酶(POD)、还原型谷胱甘肽(GSH)的提取与含量测定分析,实验结果表明:干旱胁迫下的小麦幼苗的脯氨酸(Pro)、丙二醛(MDA)、过氧化氢(H2O2)、多酚氧化酶(PPO)、过氧化物酶(POD)、还原型谷胱甘肽(GSH)的含量均比正常小麦幼苗的含量高,证明干旱胁迫对小麦生理生化指标有影响。
关键词:干旱胁迫、小麦、生理指标
引言:目前全球干旱、半干旱地区约占土地总面积的36%,占耕地面积的
43%,大多数国家都面临水资源危机,我国也不例外[1]。干旱在我国分布广泛,一年四季均有可能发生,对农业生产影响十分严重。小麦是世界上仅次于玉米的第二大粮食作物,世界上约有70%的小麦播种面积分布在干旱、半干旱农业区[2]。如果干旱发生在小麦开花期或者灌浆期,就会导致其灌浆期减短、产量严重减少
[3]
。其在生长过程中,经常会受到干旱的影响,在世界范围内,由于水分所造成
的减产,可能要超过其他因素所导致的产量损失总和[4]。由于环境污染导致可利用水资源大大减少,干旱现象日益严重。因此,研究干旱胁迫对小麦的生理生化指标的影响,提高小麦的抗旱性能、提高小麦产量具有重要意义。
1材料与方法:
1.1实验材料:小麦种子和玉米种子 1.1.1材料处理:
小麦和玉米种子吸胀12h后即可用于测定种子发芽率的实验。 选取长势一致的小麦幼苗做干旱5天处理。
干旱胁迫下处理的小麦幼苗为实验组,正常培养的小麦幼苗为对照组。
1.1.2实验试剂:
TTC、曙红染液、0.1% HgCl、蒸馏水、3% 磺基水杨酸(SSA)、石英砂、冰乙酸、茚三酮、0.1% TCA、0.5% TBA、20% 三氯乙酸(TCA)、0.3% TCA [用20% TC配制]、0.1 %Ti(SO4)2[用20%(v/v)H2SO4配制]、50 mmol/L PBS(PH=6.0,内含0.1 mmol/L EDTA,1%PVP)、POD反应混合液(10 mmol/L愈创木酚,5 mmol/L H2O2,用PBS溶解)、 PPO反应混合液( 20 mmol/L邻苯二酚,用PBS溶解)、3% 三氯乙酸(TCA)、1M NaOH 、2 mM DTNB、5%三氯乙酸(TCA)、0.15 M NaH2PO4 (pH=7.4)、44%磷酸和4%联吡啶、3tCl3、
1.1.3实验仪器:
研钵、试管、电子天平、移液管、洗耳球、722型分光光度计、离心机、微量加样器、恒温水浴锅。
1.2实验方法:
1.2.1种子发芽率的测定:
各取50粒吸胀的玉米种子或小麦种子,沿胚的中心线切成两半(严格区分两个半粒),进行下列实验:其中50个半粒进行TTC染色(30℃水浴 20min);另50个半粒进行曙红染色(室温染色10 min),洗净后观察。根据两种方法的染色情况,分别计算发芽率。
1.2.2脯氨酸(Pro)含量的测定:
提取:分别取0.1 g实验组和对照组的幼苗→加入3 mL 3%磺基水杨酸(SSA)
和少许石英砂→充分研磨→用2 mL 3% SSA洗研钵→ 5000rpm离心10 min →量上清液体积。
测定:上清液各2 mL →分别加入 2 mL冰乙酸和2 mL茚三酮试剂→煮沸
15 min→冷却后→5000 rpm离心10 min(若没沉淀可略此步骤) →分别测定A520。
计算:
A520V总?V显?Pro content =
??L?WV用
1.2.3丙二醛(MDA)含量的测定:
(umol.gFW)
-1
提取:分别取0.1 g实验组和对照组→加入3 mL 0.1% TCA 和少许石英砂→
充分研磨→用2 mL 0.1%TCA洗研钵→5000 rpm离心10 min →量上清液体积。
测定:分别取上清液各1 mL →加入0.5%TBA(用20%TCA配制) 3 mL→
煮沸15 min→冷却后→5000 rpm离心5 min (视沉淀有无)→分别测定OD450和OD532。
计算: OD450=C1×85.4
OD532= C1×7.4+155000×C2
求解方程得:C1/(mmol/L)=11.71 OD450
C2/(?mol/L)=6.45 OD532- 0.56OD450
式中,C1为可溶性糖的浓度,C2为MDA的浓度。
1.2.4过氧化氢(H2O2)含量测定:
提取:分别取0.1 g实验组和对照组→加入3 mL 0.3%三氯乙酸(TCA)和
少许石英砂→充分研磨→用2 mL TCA洗研钵→5000 rpm离心10 min →量上清液体积。
测定:分别取上清液各4 mL →加入0.1%Ti(SO4)2 [用20%(v/v) H2SO4配制]0.
2 mL→摇匀→ OD410。 计算:
H2O2 content =
A410V总-1
(umol.gFW) ?V显???L?WV用
1.2.5抗氧化酶活性的测定:
提取:分别取0.1 g实验材料→加入少许石英砂和3 ml提取液(50mmol/L PBS,
pH6.0,内含0.1mmol/ LEDTA, 1%PVP) → 充分研磨 →转入离心管中→用2 ml提取液洗研钵→ 5000 rpm离心10 min →量上清液体积→用于测定POD和PPO酶活性或分装后转至-20或-80℃保存。 POD测定:取POD反应混合液(10 mmol/L愈创木酚,5 mmol/L H2O2,
用PBS溶解)2.95 ml,加入酶液50 ml(空白调零用提取液取代),立即记时,摇匀,读出反应2 min时的A470。
PPO测定:取PPO反应混合液( 20 mmol/L邻苯二酚,用PBS溶解)2.9 ml,
加入酶液0.1 ml(空白调零用提取液取代),立即记时,摇匀,读出反应 2 min时的A410。
计算:
以每分钟A值变化0.01所需要的酶液的量为一个活力单位(U),则:
A470V总POD activities = ?V显???W?tV用PPO activities =
1.2.6谷胱甘肽(GSH)的含量测定:
(umol.gFWmin)
-1-1
A410V总?0.01?W?tV用(U.gFW)
-1
提取:分别取0.1 g实验组和对照组的幼苗→加入3 mL 3%三氯乙酸(TCA)
和少许石英砂→充分研磨→用2 mL 3% TCA洗研钵→ 5000 rpm离心10 min →量上清液体积。
测定:上清液各2 mL (空白用3%三氯乙酸代替) → 分别加入0.4 mL1M
NaOH → 1 mL 2 mM DTNB → 25 ℃5 min→测定A412
计算:
GSH content =
A412V总?V显???L?WV用(umol.gFW)
-1