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基于FRET荧光蛋白探针的活体定量分子影像方法探究

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第35卷 第6期2016年 12月北京生物医学工程

BeijingBiomedicalEngineering

Vol??35 No??6December 2016

基于FRET荧光蛋白探针的活体定量分子影像方法探究

王颖奇1 唐吉1 刘晴1 白净1 刘晓冬1,2

摘 要 目的荧光共振能量转移(fluorescentresonanceenergytransfer,FRET)探针由于自身仍存在诸多局限,其在活体成像领域尚未得到广泛应用。本文旨在解决FRET探针在活体定量分子影像应用中所存在的瓶颈问题,即如何利用FRET探针精准计算目标物浓度,以及如何基于FRET探针实现三维成像。方法基于探针和目标物结合时的化学反应平衡关系,提出一种新型分析方法,以精确定量待测物[钙调素(calmodulin,CaM)]的浓度。同时对于FRET探针的活体分子成像,结合荧光透射成像(3D-FMT)方法,建立了可进行三维时空动态FRET检测的平台系统,对FRET探针的测量结果(即待测物浓度)进行实时定量的三维重建。结果准确地定量了待测物CaM浓度,并得到了高质量的3D-FRET分布影像。结论提出FRET探针在活体成像应用领域两个关键问题的解决方案,为基因编码FRET探针向活体分子影像领域的推广奠定了重要的技术基础。

关键词 荧光共振能量转移;基因编码FRET探针;荧光蛋白;荧光断层成像;钙调素DOI:10??3969/j.issn.1002-3208??2016.06.03.

中图分类号 R318;Q631  文献标志码 A  文章编号 1002-3208(2016)06-0566-05

Quantitativein?vivomolecularimagingbasedon

genetically?encodedFRETprobes

1DepartmentofBiomedicalEngineering,SchoolofMedicine,TsinghuaUniversity,Beijing 100084;【Abstract】 ObjectiveThere’relimitationsintheapplicationofFluorescentresonanceenergytransfer

2SchoolofLifeSciences,TsinghuaUniversity,Beijing 100084WANGYingqi1,TANGJi1,LIUQing1,BAIJing1,LIUXiaodong1,2

(FRET)sensorinin?vivomolecularimagingandourresearcharetryingtosolvethem??Oneofthebottleneck

problemsishowtoquantifythebindingequilibriumforthereactionbetweentheprobesandtargets??Theother

problemishowtoutilizeFRETsensortoreconstruct3-DimagesfortemporalandspatialdynamicsoftheBSCaMIQ,astheexemplar,bywhichweproposeanewmethodtoanalyzetheFRETratioduetothebindingandthe3-DFRETdistributionofBSCaMIQ??ConclusionsOurworkprovidesthesolutionsforthetwomajor

technicalfoundationsforfuturedevelopmentof

targetedmoleculesinthelivebody??MethodsWetakeanestablishedFRETsensorofcalmodulin(CaM),betweenendogenousCaMandBSCaMIQ??WealsoutilizeBSCaMIQina3-DFMTsystem,bywhich3-DFRETbottleneckproblemsinapplicationsofFRETprobestoquantifytargetedbiomolecules,contributingtothe

基金项目:国家自然科学基金(31370822,81171382,81371604)、北

京市自然科学基金(7142089)资助

作者单位:1清华大学医学院生物医学工程系(北京 100084)

2清华大学生命科学学院(北京 100084)

通信作者:刘晓冬,研究员。

E?mail:liuxiaodong@mail.tsinghua.edu.cn

thustheCaMdynamicsisattempted??ResultswesuccessfullyquantifiedtheconcentrationofCaMinlive-cells

molecularimagingwithFRETprobesinvivo??

【Keywords】 fluorescentresonanceenergytransfer;genetically?encodedFRETprobe;fluorescentprotein;fluorescencemoleculartomography;calmodulin

第6期      王颖奇,等:基于FRET荧光蛋白探针的活体定量分子影像方法探究

·567·

0 引言

energytransfer,FRET)探针是一种基于荧光共振能

荧光共振能量转移(fluorescenceresonance

一种全新的计算拟合方法,在活细胞内对BSCaMIQ[5]与apo-CaM的结合反应过程进行了多点拟合计算,定量出了不同状态下活细胞内apo-CaM的准确浓度。

量转移的生物传感器[1],一般的FRET探针由荧光子发生相互作用时,会引发与其相连的荧光供体和荧光受体耦合角度及相对距离的变化,进而使荧光供体和受体之间的FRET效率发生变化[2]。

BSCaMIQ由N端的黄色荧光蛋白YFP、C端的

供体、荧光受体以及传感器构成,当传感器与特定分

1 定量算法与实验设计

1??1 针对FRET探针的新型定量算法

在计算FRET比率时参考33-FRET算法[6],其

核心是通过对照实验,采用逼近的方式计算出供体发射串扰与受体激发串扰。该算法可以得到精确的FRET比率FR的值。在此基础上,提出了一种新的拟合计算方法,可以根据FR来准确定量活细胞内钙调素浓度。

有如下线性关系:

FR=FRmax-(FRmax-FRmin)Sb

Sb=

[Sb]

首先,FR与BSCaMIQ结合apo-CaM的比例Sb

(1)

青色荧光蛋白CFP和连接它们的短肽组成[图1(a)][3]。该短肽由27个氨基酸组成:AAATK-KGEKK。BSCaMIQ可以与自由状态下的钙调素apo-CaM相结合。在发生结合之前,BSCaMIQ上的CFP

IQAAFRGHITRKKLKGEKKGAA。该短肽基于神经调制蛋白的IQ域:AAATKIQASFRGHITRKKL-

(作为荧光供体)与YFP(作为荧光受体)之间存在较强的FRET,但在结合钙调素之后由于构象改变导致其FRET效率降低,因而成为一种良好的钙调素指示剂。

钙离子(Ca2+)可以与apo-CaM相结合,使其构

(2)

[Sb]+[Sfree]

  式中:Sb是结合了apo-CaM的BSCaMIQ的比例;[Sb]是结合了apo-CaM的BSCaMIQ的浓度;[Sfree]是自由的BSCaMIQ的浓度。[Sfree]的关系为:

验流程与实验材料)的平均荧光强度SCFP与[Sb]、  式中:a为成像设备参数,对于在同一设备上进行比对的不同实验结果而言,可以省略这一常数。

解离常数Kd为:

Kd=

[Sfree][apoCaM]

[Sb]

SCFP=a([Sb]+[Sfree])

(3)

在成像过程中,单个细胞在CFP通道(详见实

象发生变化,进而无法与BSCaMIQ进行结合。因此,BSCaMIQ是特异性的apoCaM探针。BSCaMIQ与apo-CaM相互作用的过程可认为是一种化学结合过程,想要定量apo-CaM的浓度,不仅需要计算出FRET的测量比率(apparentFRETratio或FR),还需要计算出参与反应的BSCaMIQ的量,以准确算出apo-

CaM的浓度。钙调素CaM与多种重要的生物学过程密切相关[4]。因此,精确定量活细胞内apo-CaM浓度具有非常重要的意义。

真实的生理环境复杂多变,为在生理情况下使用BSCaMIQ探针实现对apo-CaM浓度的精确测量,使用已报道的定量效果最好的33-FRET算法来计算FRET测量比率(等价于FRET效率),并提出了

[Sb]=

+Kd+C-SaCFP

  假定属于同一细胞系的细胞在相同培养条件下细胞内的apo-CaM总量是一定的,则:  结合式(3)~式(5),可以解出[Sb],如下:

[apoCaM]+[Sb]=C

(5)

(4)

  由此,式(1)中所有参量则都可以通过测量和计算获得。在实际的实验过程中,对处于同一状态的细胞系,采集多个细胞的数据。在得到多组数据的情况下,通过式(1)对FRET比率FR和供体荧光

?1?4C?SCFP+Kd+C÷-S

aCFPèa?

(6)

强度SCFP进行最小二乘拟合,从而精确地还原出结以表征BSCaMIQ浓度SCFP为横坐标。通过该结合曲线,可以准确计算出apo-CaM的浓度。

合曲线。结合曲线以表征FRET比率FR为纵坐标,

·568·

1??2 3D-FMT成像平台上的实验设计

北京生物医学工程                   第35卷

活体FRET检测领域的一大难点,主要原因有以下两点。

多数使用的是非定量FRET方法[7](如pb?FRET、比例FRET等),这些方法无法准确计算出FRET,无法对待测分子进行准确定量,因而不具备向活体检测一是在已报道的活体FRET检测方法中,绝大

FRET探针如何与三维荧光重建相结合一直是

2 实验结果与分析

2??1 活细胞内apoCaM的定量分析

在实验中,使一组细胞单独表达BSCaMIQ,另一

组细胞则共表达CaM和BSCaMIQ。实验结果如图1

(b)所示:红色的点和线表征了BSCaMIQ仅与细胞内源性的钙调素结合的情况,而黑色的点和线表征了在过表达钙调素情况下BSCaM与钙调素的结合情领域推广的可能性。

二是FRET比率的三维重建是一项具有挑战性的工作[8]FRET,由于所获得的荧光强度信息直接用于性要求非常高比率等重要参数的计算。

,所以对成像的精确-首次在FRET结合FRET,实现了算法与三维荧光透射成像探针实验中将定量效果最好的FRET探针BSCaM(3D-FMT)平台相

33

比率的时空动态三维重建IQ在仿体(准活体)上FRET。

1??3 实验流程与实验材料宽场荧光显微镜下的FRET检测采用33方法中标准的3通道3样品的方式进行。3通道分-FRET

别为:CFP通道,采用CFP激发波长,接收CFP发射波长FRET,使用长,使用通道440,440采用nmnm激发滤光片CFP激发滤光片激发波长,480,530,接收nm发射滤光片nm发射滤光片YFP发射波;YFP通道,;

长,使用488采用nm激发滤光片YFP激发波长,530,nm接收发射滤光片YFP发射波。3样品分别为:实验组(表达蛋白依据实验目的而定);CFP单独对照组(单独表达CFP);YFP单独对照组(单独表达YFP)。FR的具体计算过程请参考文献[6],本篇不再赘述。

在3D-FMT平台上,采用相同参数的滤光片构建同样的三通道。为了实现三维重建,得到更多的空间分布信息,每次成像时,对样品进行了12个角度的360°旋转成像,将12个角度下的33算结果进行重建,并最终得到三维水平的-FRETFRET计分布(图2)。

BSCaM在活细胞实验中,以pcDNA3??1为载体,构建了

IQ质粒和CaM质粒。以HEK293T细胞系作为表达体系,将质粒通过lipo2000试剂进行转染。

在3D-FMT成像中,以从细胞表达体系中纯化出来的蛋白质为样本,表达方式与在活细胞中相同。

况。通过新型计算拟合方法和拟合函数得到了两个IQ重要的参数———完全无外源性apo-CaM时BSCaM的FRET比率指数FR-CaMIQ的总浓度,分别为4??78max和过表达时胞内apoμmol/L和11??45μmol/L,从而实现了对apo-CaM浓度的精确定量。

图1 BSCaMIQ在有或无外源性钙调素情况下

与CaM的结合曲线

Figure1 BindingcurveofBSCaMIQandCaMwithorwithoutexogenousCaMoverexpression

2??2 3D载体成像实验结果

如图2(a)所示,FMT成像平台由多部分构成,核心部分为一个可旋转的成像平台,其中放置一个装满脂肪乳的容器,样品装入内径为4mm的细管,插入到脂肪乳中,以模拟真实生物体中组织的光学

基于FRET荧光蛋白探针的活体定量分子影像方法探究

第35卷 第6期2016年 12月北京生物医学工程BeijingBiomedicalEngineeringVol??35 No??6December 2016基于FRET荧光蛋白探针的活体定量分子影像方法探究王颖奇1 唐吉1 刘晴1 白净1 刘晓冬1,2摘 要 目的荧光共振能量转移(fluorescentresonance
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