Botanical Research 植物学研究, 2020, 9(4), 392-399
Published Online July 2020 in Hans. http://www.hanspub.org/journal/br https://doi.org/10.12677/br.2020.94049
Study on Tissue Culture and Rapid Propagation Technology of Medicinal Plant Tussilago farfara
Xiaoling Li1, Rong Fan2, Menghong Hu3*
12
Gansu Vocational and Technical College of Forestry, Tianshui Gansu Gansu Xiaolongshan Forestry Experimental Bureau, Tianshui Gansu 3
Gansu Province Xiaolongshan Forestry Experimental Bureau Forestry Scientific Research, Gansu Province Key Laboratory of Secondary Forest Cultivation, Tianshui Gansu
Received: Jul. 1, 2020; accepted: Jul. 17, 2020; published: Jul. 24, 2020
stthth
Abstract
To provide technical support for the industrialization, scale and standardization planting of Tussilago farfara, the young stem segments with axillary buds were used as explants, the effects of three substrates (MS, White and B5) , different hormones and concentrations on callus induction, adventitious bud differentiation, adventitious bud proliferation, rooting and growth of Tussilago farfara were studied, MS + 2, 4-D 1.0 mg?L?1 + 6-BA 3.0 mg?L?1 was the most suitable medium for Callus induction from the young shoot segment of Tussilago farfara. The induction rate was 90.0%. The best medium for adventitious bud differentiation was MS + NAA 2.0 mg?L?1 + 6-BA 3.0 mg?L?1, the differentiation rate reached 96.67%. White was the best medium for the growth and prolifera-tion of adventitious buds. The ideal combination of White + 0.2 mg?L?1 IBA + 2.0 mg?L?1 6-BA, White + 0.1 mg?L?1 IBA + 2.0 mg?L?1 6-BA combination reached 4.86 cm in length, the multiplica-tion multiple of bud was 6.5, 1/2MS + IBA 0.1 mg?L?1 + NAA 1.0 mg?L?1 combination was the most suitable upgrading medium, the rooting rate was 100.0%, the average rooting number is 5.5, the average root length is 3.60 cm, the root system is vigorous, the perlite:vermiculite:Humus = 2:2:1 is the best bottle matrix proportion of seedling transplanting, the transplanting survival rate is high, the survival rate is 98.8%. The rapid propagation of Calli from axillary buds of Coltsfoot can meet the needs of industrial and large-scale production.
Keywords
Tussilago farfara, Young Stem Segments, Stroma, Hormones, Concentrations
药用植物款冬组培快繁技术研究
李晓玲1，樊 嵘2，胡勐鸿3*
*通讯作者：胡勐鸿(1965-)，高级工程师，主要从事云杉杂交制种和良种基地管理，作者简介：李晓玲(1970-)，女，副教授。主要从事组织培养。
文章引用: 李晓玲, 樊嵘, 胡勐鸿. 药用植物款冬组培快繁技术研究[J]. 植物学研究, 2020, 9(4): 392-399. DOI: 10.12677/br.2020.94049
李晓玲 等
12
甘肃林业职业技术学院，甘肃 天水 甘肃省小陇山林业实验局，甘肃 天水 3
甘肃省小陇山林业实验局林业科学研究，甘肃省次生林培育重点实验室，甘肃 天水
收稿日期：2020年7月1日；录用日期：2020年7月17日；发布日期：2020年7月24日
摘 要
为款冬(Tussilago farfara)产业化、规模化、标准化种植提供技术支撑，以款冬带腋芽的幼嫩茎段为外植体，采用3种基质(MS、White和B5)、不同激素和浓度对款冬愈伤组织诱导、不定芽分化、不定芽增殖、生根、生长影响的研究，结果显示：MS + 2，4-D 1.0 mg?L?1 + 6-BA 3.0 mg?L?1是款冬腋芽的幼嫩茎段愈伤组织最适宜的诱导基质，诱导率90.00%，不定芽分化最好的基质是：MS + NAA 2.0 mg?L?1 + 6-BA 3.0 mg?L?1，分化率达到96.67%，对不定芽生长长和增殖效果最好的基质种类是White，其基质、激素和激素浓度的理想组合为White + 0.2 mg?L?1 IBA + 2.0 mg?L?1 6-BA, White + 0.1 mg?L?1 IBA + 2.0 mg?L?1 6-BA；芽长达到4.86 cm，芽的增殖倍数是6.50。1/2MS + IBA 0.1 mg?L?1 + NAA 1.0 mg?L?1组合是最适宜的生根基质，生根率为100.00%，平均生根数5.50条?株?1，根系平均长3.60 cm，根系生长旺盛，珍珠岩:蛭石:腐殖土 = 2:2:1是瓶苗移栽最好的基质配比，成活率达到96.00%以上。款冬腋芽的幼嫩茎段愈伤组织生根快速繁殖技术能够满足工厂化、规模化生产的需求。
关键词
款冬，幼嫩茎段，基质，激素，浓度
Copyright ? 2020 by author(s) and Hans Publishers Inc.
This work is licensed under the Creative Commons Attribution International License (CC BY 4.0). http://creativecommons.org/licenses/by/4.0/
Open Access 1. 引言
款冬(Tussilago farfara)属于菊科款冬属植物。其药用部分为款冬的干燥花蕾，其性温、味辛、微苦。归肺经，具有润肺下气、化痰止嗽的作用[1]。外感内伤、寒热虚实的咳嗽，皆可应用[2] [3]。特别是肺虚久咳不止，最为适用。现代药理研究证明，款冬花具有收缩血管、抗血小板活化因子、抗氧化、抗炎、抗肿瘤等作用。其主要化学成分为黄酮、萜类、酚类、生物碱类及挥发油类[2] [3] [4] [5]。主产河南、甘肃、陕西、山西等省[6]，以甘肃生产的质量最好。产量约占全国的30%以上，属十大陇药之一[7] [8]。由于款冬适应性强，对土壤要求不严，易于栽培、好管理、见效快，经济价值比种植农作物收益高，随着野生资源的日趋匮乏和市场价格的逐年走强[9]，种植面积越来越大，是致富的好项目之一[8]。但是款冬成熟种子很少，无法大量用种子繁殖，根状茎繁殖系数低、工作强度大、栽培年限长，难以满足产业化、规模化、标准化生产的要求。植物的无性系苗具有生长特性、质量、标准、规格等一致的特性，便于规模化、标准化和工厂化生产[10] [11] [12]。组织培养是快速无性繁殖并能满足产业化、工厂化、标准化生产最有效的方法，在菊科植物中已有较多的研究[13]。目前款冬的研究在栽培技术[14]-[22]、病虫防治技术[23] [24]、采收加工[25] [26]、质量标准[27] [28]、化学成分[29] [30]、药理、毒性等[5] [31] [32]方面有广泛的研究；关于款冬组织培养和快繁技术也有研究，但梁文裕等[33]和王贵军等[34]只选用MS一
DOI: 10.12677/br.2020.94049
393
植物学研究
李晓玲 等
种基质，王杰等[35]和任继文等[36]利用款冬幼叶作为外植体，进行组织培养与再生体系构建，但是采用幼叶作为外植体受时间(季节)限制，而且叶柄及背部覆细小绒毛，消毒难度大。因此在前人研究的基础上，以带腋芽的款冬幼嫩茎段为外植体，选用3种基质(MS、White、B5)和不同激素浓度对款冬幼嫩茎段愈伤组织诱导快速繁殖影响的研究，筛选出组织培养快速繁殖适宜的基质、激素种类和浓度，期望为款冬产业化、规模化、工厂化栽培提供技术支撑。
2. 试验材料与方法
2.1. 材料来源与处理
试验材料为小陇山林区天然分布的款冬。4月初，将采集款冬当年生幼嫩茎段，用自来水将其表面灰尘泥土冲洗干净，将茎段剪成4~5 cm小段，放入消毒瓶中，在超净工作台上，加入2滴聚氧乙烯脱水山梨醇单油酸酯(吐温80)，以加速消毒剂的浸润效果。75%乙醇浸泡30 s，再转入饱和漂白粉上清液浸泡900 s，浸泡过程中要不时晃动，最后用无菌水冲3遍，每次1~2 min，吸干水分后，在超净工作台上，将已消毒的款冬剪成长1.0~2.0 cm含有一个节的小茎段，按照试验设计，使用无菌镊子接种于灭好菌的培养基中，置培养室培养。
2.2. 试验设计与培养条件
2.2.1. 款冬愈伤组织诱导培养基试验
愈伤组织诱导培养基设计了3种基质(MS、White、B5) + 2，4-D质量浓度2个梯度(0.5、1.0 mg?L?1) + 6-BA质量浓度2个梯度(2.0、3.0 mg?L?1)的6个处理(组合)，每个处理接种30个小块(试验设计见表1，试验1)。
Table 1. Experimental design of tissue culture and rapid propagation of Tussilago farfara 表1. 款冬组培快繁试验设计表
试验1
处理 1 2 3 4 5 6
基质 MS MS White White B5 B5
2, 4-D 0.5 1.0 0.5 1.0 0.5 1.0
6-BA 2.0 3.0 2.0 3.0 2.0 3.0
试验2 NAA 1.0 2.0 1.0 2.0 1.0 2.0
6-BA 2.0 3.0 2.0 3.0 2.0 3.0
IBA 0.1 0.2 0.1 0.2 0.1 0.2
试验3
6-BA 2.0 ３.0 2.0 ３.0 2.0 ３.0
基质 1/2MS 1/2MS 1/2White 1/2White 1/2B5 1/2B５
IBA 0.1 0.2 0.1 0.2 0.1 0.2
试验4
NAA 1.0 2.0 1.0 2.0 1.0 2.0
注：表中不同激素浓度单位为mg?L?1。
2.2.2. 款冬不定芽分化培养基的试验
将诱导获得的愈伤组织剪切至分化培养基，每个培养基中移入3个愈伤块。不定芽分化培养基设计了3种基质、激素(NAA) 2个浓度梯度(1.0、2.0 mg?L?1)、细胞分裂素6-BA (2.0、3.0 mg?L?1) 2个浓度梯度的6个处理(试验设计见表1，试验2)。 2.2.3. 不同基本培养基对款冬组培苗增殖的试验
设计了3种基质(MS、White、B5)和(IBA) 2个(0.1、0.2) mg?L?1浓度梯度的6个处理(见表1，试验3)，每个处理都添加2.0 mg?L?1的细胞分裂素6-BA。选取分化苗中生长健壮的单芽切成1.0 cm左右长的茎段，
DOI: 10.12677/br.2020.94049
394
植物学研究
李晓玲 等
每个处理接种30个茎段。 2.2.4. 款冬组培苗生根培养基试验
将增殖获得的丛生芽切成1.0 cm左右高的茎段，接种于生根培养基，生根培养基设计了基质(1/2MS、1/2White和1/2B5) + IBA (0.1、0.2) mg?L?1 + 6-BA (1.0、2.0) mg?L?1的6个处理(见表1，试验4)，每个处理接种30个茎段。 2.2.5. 炼苗与移栽驯化
炼苗时将生根瓶苗放入温室中，瓶盖打开1/2炼苗2 d后，移开瓶盖或全部打开炼苗4，在炼苗期间不断喷水。把炼好的健壮苗从培养基取出，洗净培养基，用0.1%多菌灵溶液浸泡根部3 min，清水洗去药液，移栽在装有1%的高锰酸钾消毒基质的苗钵上，基质比例为珍珠岩:蛭石:腐殖土 = 2:2:1，浇透水后放置在通风阴凉的温室大棚中，定期施肥浇水。 2.2.6. 培养条件
以上培养基pH值均为5.6~5.8，琼脂6 g/L，蔗糖30 g/L，在0.1 MPa (121℃)灭菌22 min，接种后置于20℃~23℃培养，光照强度为2000 lx，每天光照时间为12 h。 2.2.7. 数据获取与处理
30 d后统计愈伤组织诱导结果、芽分化数、生根状况，计算诱导率、芽分化率、生根率和芽增殖倍数，并采用电子游标卡尺测定芽长度、根系长度，精度0.01 cm。移栽驯化40 d后统计成活株数，计算移栽成活率。
诱导率、分化率、生根率分别是出愈数、芽分化数、生根个数与接种数的比率。平均芽长、平均生根数、平均根长分别是诱导萌发芽数的总长、测定苗生根数量之和、生根数量长度之和与诱导萌发芽数量、测定苗数量、生根苗数量的比。移栽成活率为移栽株数与成活株数的比率。
数据采用spss16.0进行方差分析(GLM)和多重比较(LSD)，方差分析时百分率座反正弦转换。
3. 结果与分析
3.1. 不同培养基与植物生长调节剂组合对愈伤组织诱导的影响
2周后观察，各处理愈伤组织块明显增大，但不均一。处理1、处理2愈伤组织大、致密、呈黄绿色，处理3和处理4愈伤组织块较大、较致密、淡黄绿色，处理5和处理6愈伤组织小、疏松、呈乳黄色。其中处理1和处理2的平均诱导率最高，为76.70%，比处理3和处理4、处理5和处理6的平均诱导率高；4周后处理1和处理2培养基愈伤组织生长普遍良好，小苗健壮，叶片浓绿；由此可见不同基质间对款冬诱导率有差别。而且就处理1和处理2间诱导率也不同，处理2的诱导率比处理1高42.9%，由此可见影响款冬诱导发芽的因素除基质外还与外源激素种类、浓度有关。处理2表面最先出现小疣突，款冬愈伤组织出愈程度大，愈伤化程度高，其颜色翠绿，为团簇状(见图1(a))，是较为理想的愈伤组织诱导培养组合，诱导率为90.0% (表2)。
3.2. 不同培养基与植物生长调节剂组合对款冬不定芽分化的影响
在不考虑交互作用的情况下，方差分析显示3种基质对款冬不定芽分化的影响差异不显著(F0.05 = 1.43, ρ = 0.41)。3种基质对款冬不定芽分化的影响虽然差异不显著，但3种基质分化率的大小依次为MS (86.70 ± 14.14)%、White (84.95 ± 2.33)%、B5 (71.95 ± 2.33)%，NAA 2.0 mg?L?1的分化率 > NAA 1.0 mg?L?1，6-BA 3.0 mg?L?1 > 6-BA 2.0 mg?L?1，NAA与6-BA高浓度与低浓度平均分化率相同，为(84.43 ± 13.48)%和(77.77
DOI: 10.12677/br.2020.94049
395
植物学研究
李晓玲 等
± 5.08)%。NAA和6-BA浓度对不定芽分化率的影响趋势一致，都是较高浓度比低浓度有利于不定芽的分化。而NAA 1.0 mg?L?1 + 6-BA 2.0 mg?L?1不定芽分化率平均为(77.77 ± 5.08)%，NAA 2.0 mg?L?1 + 6-BA 3.0 mg?L?1的分化率是(84.43 ± 13.48)。分析可知MS + NAA 2.0 mg?L?1 + 6-BA 3.0 mg?L?1组合不定芽分化率最高，达到96.67% (见图1(b))。
Table 2. Effects of different basic medium and plant growth regulator combinations on callus induction, adventitious bud differentiation and proliferation of Tussilago farfara
表2. 不同基本培养基与植物生长调节剂组合对款冬愈伤组织诱导、不定芽分化、增殖的影响
试验1
处理
诱导率(Induction rate) % 63.30 90.00 50.00 43.30 53.30 40.00
试验2
试验3
生长状况(Growth Condition) 长势旺盛，嫩绿色，生长慢 长势较旺盛，淡嫩绿色，生长较慢 长势较旺盛，浅绿色，生长较快，不定芽壮
长势较旺盛，嫩绿色，生长较快 长势一般浅绿色，不定芽较弱 生长慢，浅绿色，不定芽较弱
分化率平均芽长
芽增殖倍数
(Differentiation (Average bud length)
(Bud Multiplication)
rate) % cm
76.70 96.70 83.30 86.60 73.30 70.00
4.19 4.36 4.86 4.53 2.04 2.39
2.30 2.70 6.50 5.90 1.80 1.20
1 2 3 4 5 6
Figure 1. Tissue culture, rapid propagation and regeneration of Tussilago farfara. (a) is the callus induced
from the stem segment, (b) is the differentiation of adventitious buds, (c) is the subculture, (d) is the rooting culture and (e) is the refined seedling of Tussilago farfara
图1. 款冬的组培快繁与再生。(a)为款冬茎段诱导出的愈伤组织，(b)为款冬不定芽的分化，(c)为款冬继代培养，(d)为款冬生根培养，(e)为款冬炼苗
3.3. 不同基本培养基对款冬组培苗增殖的影响
方差分析结果，基质对款冬不定芽生长的影响差异达显著水平(F0.05 = 56.77, ρ = 0.02)，多重比较结果，基质B5的平均芽长最低，为(2.22 ± 0.25) cm，且与MS和White差异显著，基质MS与White间差异不显著，其中White基质的平均芽最长为(4.70 ± 0.23) cm，其次就是MS基质，为(4.28 ± 0.12) cm。IBA浓度对不定芽生长的影响差异不显著，IBA 0.1 mg?L?1和0.2 mg?L?1的平均芽长分别为(3.70 ± 1.47) cm和(3.76 ± 1.19) cm，0.2 mg?L?1 IBA的平均芽长比1.0 mg?L?1略高1.7%。
对款冬不定芽增殖倍数的影响3种基质间具有显著差异(F0.05 = 73.56, ρ = 0.01)，IBA浓度的影响差异不显著。多重比较显示White款冬芽的增殖倍数最高，为(6.20 ± 0.42)，且与MS和B5差异显著，MS和B5间差异不显著，款冬不定芽的增殖倍数分别为(2.50 ± 0.28)和(1.50 ± 0.42)。本实验中White + 0.1 mg?L?1 IBA组合(添加2.0 mg?L?1的6-BA)款冬不定芽的生长和增殖倍数是所有组合中最高的，分别达到4.86 cm和6.50倍(图1(c))。综合来看款冬丛生芽分化和增殖的理想基质为White，IBA浓度宜选用0.2 mg?L?1，理想组合为White + 0.2 mg?L?1 IBA (添加2.0 mg?L?1的6-BA) (本实验没有涉及该组合)。
DOI: 10.12677/br.2020.94049
396
植物学研究
药用植物款冬组培快繁技术研究 - 图文
