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移植性肿瘤动物模型
目前临床所使用的抗肿瘤药物，大多数是通过动物移植性肿瘤实验法筛选而被发现的，移植性肿瘤动物模型是现代肿瘤研究中应用的最广最有价值的模型。其优点包括：（1）可使一群动物被同时接种同样量的瘤细胞，生长速率比较一致，个体差异较小，接种成活率近100%；（2）对宿主的影响相类似，易于客观判断疗效；（3）可在同种或同品系动物中连续移植，长期保留供试验用；（4）试验周期一般较短，试验条件易于控制等。但是这类肿瘤生长速度快、增殖比高、体积倍增时间短、肿瘤生命性质简单，与人类肿瘤具有明显不同；特别是与人类的致死性实体恶性肿瘤生命性质、与生长发生机制差异更大。存在着能够为现代肿瘤基础生命科学研究模拟人类恶性肿瘤综合生命性质的局限性、片面性。现在世界上保有近500种的动物移植瘤，但常用于筛药的不到40种，多数为小鼠肿瘤，其次是大鼠和仓鼠移植瘤，包括小鼠L1210淋巴白血病，艾氏腹水瘤，Friehd病毒白血病，肉瘤180，Lewis肺癌，腺癌755，白血病615，白血病P388，Walker-256，吉田肉瘤，肉瘤45，Liol淋巴瘤，Dunning 白
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血病，白血病L5170Y，P1534淋巴白血病，P1798淋巴肉瘤，LPC-1浆细胞瘤，淋巴瘤8，Gardner淋巴肉瘤，B16或Cloadman黑色素瘤，Ridaway骨肉瘤，肉瘤37，P315白血病，Ｗagner癌肉瘤，Mur hy-sturm淋巴肉瘤，Jensen肉瘤，Geurin氏癌，仓鼠十二指肠腺癌和人体肉瘤HSL第1代杂交鼠移植。它们对抗癌药作用的敏感性大致可分为敏感，中度敏感，低敏感和不敏感瘤株四类，同样敏感株对抗癌药的疗效水平也不相同。
（1）
实验动物的选择：移植性肿瘤常用的动物为清洁级小鼠、大鼠和地鼠等，每批动物都应有一定的微生物及遗传背景，来源明确，根据瘤株的要求选用近交系、远交系或杂交第一代（F1）动物，一般雌雄皆可（乳腺癌、卵巢癌、宫颈癌必须用雌性动物），但每批实验只用一个性别。
（2）
实验一般要求：需在无菌环境下进行。可在接种罩、层流工作台或无菌室内操作。动物处死后，新洁尔灭或碘酊、酒精消毒，对每个实体瘤应分别用灭菌的外科器械
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切取；对腹水瘤应灭菌的空针筒抽吸。瘤块污染常是接种失败的主要原因。在高温季节，应注意瘤源的直接降温，可在盛有瘤源的器皿周围放置冰块。
（3）
常用的皮下接种部位为右前肢腋下；肌肉接种常注射于大腿肌肉部；腹水型接种于腹腔内。
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【肿瘤移植操作步骤】
1.
肿瘤的移植
1） 瘤悬液移植法：
（1）
选择接种后肿瘤生长旺盛且无溃破而且动物健康状况较好的瘤源动物，颈椎脱臼处死，固定于蜡板上，用碘酊、酒精消毒操作部位皮肤（消毒面积要尽可能大一些）。切开皮肤，在无菌条件下取下瘤块。
（2）
将瘤块去除坏死组织，称重，剪成小块，用玻璃匀浆器或机械匀浆器研磨均匀后放入无菌容器内，按照1：3 ~ 1：4的比例加入生理盐水，稀释成瘤细胞悬液，使其细胞数为（1~2）*10个/ml。
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（3）
用碘酊、酒精消毒动物的接种部位，用空针筒抽吸0.2ml细胞悬液，注射于接种部位。每次抽吸前应将细胞悬液混匀，整个操作应在30min内完成。
2）培养细胞的移植法：
（1）
将单层培养的细胞消化脱壁后稀释为一定浓度的细胞悬液
（2）
对细胞悬液进行活细胞计数，方法如下： 用新配制的
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0.05％伊红或0.1％台盼蓝生理盐水溶液．将细胞悬液稀释、混匀后在血球计数盘上计数． 染色者为死细胞、不染色为活细胞。按照计数结果将细胞悬液稀释至每毫升（1~2）*10个细胞。
（3）
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用碘酊、酒精消毒动物的接种部位，用空针筒抽吸0.2ml细胞悬液，注射于接种部位。每次抽吸前应将细胞悬液混匀，整个操作应在30min内完成。
【移植性肿瘤研究法举例】
1.
腋皮下接种实体瘤模型：
【实验原理】以小鼠肉瘤S180为实验模型，接种于同种
宿主的前肢腋皮下，给予一定剂量的有抗癌活性的药物，可以抑制肿瘤在体内的生长。本方法也适用于LL、B16、Hep等实体型移植性肿瘤模型，常用于抗肿瘤生长药物的研究。
【操作步骤】 取接种于小鼠约7~10天的S180肿瘤，无菌条件操作，剔除包膜和坏死部分，选取完好的瘤块，至于玻璃匀浆器或机械匀浆器内，加入适量的生理盐水，配制成瘤细胞悬液，细胞数为（1~2）*10/ml，接种于同种异体小
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